UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA DE LA SELVA FACULTAD DE RECURSOS NATURALES RENOVABLES ESCUELA PROFESIONAL DE INGENIERÍA EN RECURSOS NATURALES RENOVABLES INFLUENCIA DEL TAMAÑO DE CORMELOS Y LA GRADIENTE ALTITUDINAL SOBRE EL COMPORTAMIENTO GERMINATIVO Y VEGETATIVO DEL Dracontium plowmanii (JERGÓN SACHA) EN FASE DE VIVERO EN TINGO MARÍA, HUÁNUCO Tesis Para optar el título de: INGENIERO EN RECURSOS NATURALES RENOVABLES PRESENTADO POR: DEICY LUZ OCHOA ALONZO Tingo María ‒ Perú 2025 UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA DE LA SELVA FACULTAD DE RECURSOS NATURALES RENOVABLES ESCUELA PROFESIONAL DE INGENIERÍA EN RECURSOS NATURALES RENOVABLES TESIS Universidad : Universidad Nacional de la Selva Facultad : Facultad de Recursos Naturales Renovables Escuela : Escuela Profesional de Ingeniería en Recursos Naturales Renovables Título : Influencia del tamaño de cormelos y la gradiente altitudinal sobre el comportamiento germinativo y vegetativo del Dracontium plowmanii (jergón sacha) en fase de vivero en Tingo María, Huánuco Autora : Deicy Luz Ochoa Alonzo Asesores : 1. Dr. Ytavclerh Vargas Clemente 2. Ing. Frits Palomino Vera Objetivo general : Determinar la influencia del tamaño de cormelos y la gradiente altitudinal sobre el comportamiento germinativo y vegetativo del Dracontium plowmanii en fase de vivero en Tingo María, Huánuco Programa de investigación : Valorización de la biodiversidad, recursos naturales y biotecnología Línea de investigación : Biodiversidad de plantas medicinales, extracción y caracterización de plantas medicinales Eje temático : Extracción y caracterización de plantas medicinales Lugar de ejecución : Tingo María Duración del trabajo : Fecha de inicio: 24/07/2024 Fecha de término: 25/06/2025 Financiamiento : Propio(X) FEDU(X) Externo ( ) Presupuesto : S/ 4 394,00 Tingo María – Perú 2025 DEDICATORIA A mis queridos padres, Juan Ochoa Aponte y Delmira Alonzo Cruz, por su inmenso sacrificio, amor incondicional y valiosa enseñanza. Gracias por ser el pilar en cada etapa de mi vida, por sus sabios consejos y por la fe que siempre depositaron en mí. Su apoyo constante ha sido fundamental para mi crecimiento personal y profesional. A mis mentores y profesores, por compartir sus conocimientos y brindarme su guía a lo largo de este camino. Su acompañamiento ha sido decisivo no solo en mi formación académica, sino también en mi crecimiento como investigador y ser humano. A mis hermanos, por su apoyo incondicional, por ser fuente de motivación constante y por el amor que siempre me han brindado. Gracias por inspirarme a seguir adelante incluso en los momentos más difíciles. A cada uno de mis amigos, que con su apoyo, compromiso y cariño hicieron posible que hoy alcance esta meta. Esta tesis es, en esencia, un tributo al respaldo incondicional que me brindaron a lo largo de mi formación y desarrollo profesional. AGRADECIMIENTOS A Dios, por ser mi guía constante en cada paso de este proceso, por otorgarme salud, fortaleza, paz y amor incondicional, que me han sostenido en los momentos más desafiantes. A mi alma mater, la Universidad Nacional Agraria de la Selva, por brindarme una formación académica integral y por inculcarme valores fundamentales que han guiado mi desarrollo tanto profesional como personal. Agradezco profundamente a todos los docentes, investigadores y personal administrativo quienes, con su dedicación, compromiso y profesionalismo, han sido piezas claves en el desarrollo de esta investigación. A mis asesores, Dr. Ytavclerh Vargas Clemente e Ing. Frits Palomino Vera por compartir sus conocimientos, enseñanzas y por su constante apoyo a lo largo de esta investigación. Agradezco profundamente cada consejo, cada crítica constructiva y cada palabra de aliento, que han sido fundamentales para el desarrollo y culminación de este trabajo. A mi familia, por ser mi pilar fundamental. Gracias por su amor, paciencia, comprensión y motivación inquebrantable. Cada palabra de aliento y cada gesto de apoyo han sido una fuente inagotable de fuerza que me ha impulsado a seguir adelante, incluso en los momentos más desafiantes. A los señores Antero Margarin, Facundo Paredes, Elmer Cordova, Emiliano Claudio, Ruswell Chaupis, Pedro Zuñiga y Julian Alvarez por permitirme extraer las plantas de Jergón Sacha para desarrollar esta investigación. Al señor Moran Feria, Santos Inocente, por su valiosa enseñanza y constante apoyo en el área de meteorología; su disposición para brindarme datos e información clave. A Roiner Estalyn, Margarin Herrera, por el apoyo brindado en la ejecución de este trabajo, así mismo por las palabras de aliento, paciencia y ayuda, que fueron fundamentales en este proceso. Finalmente, agradezco a todas aquellas personas que, de manera directa o indirecta, contribuyeron a la realización de este trabajo. Su ayuda, por más pequeña que haya parecido, marcó una gran diferencia en este proyecto. ÍNDICE Página I. INTRODUCCIÓN ..................................................................................................... 1 II. REVISIÓN DE LITERATURA ................................................................................. 3 2.1. Antecedentes ..................................................................................................... 3 2.1.1. A nivel internacional ............................................................................... 3 2.1.2. A nivel nacional ...................................................................................... 6 2.1.3. A nivel local ............................................................................................ 7 2.2. Bases teóricos ................................................................................................... 8 2.2.1. Género Dracontium ................................................................................. 8 2.2.2. Germinación de semillas ....................................................................... 13 2.2.3. Factores que afectan la germinación de semillas vegetales .................. 13 2.2.4. Tipos de germinación ............................................................................ 15 2.2.5. Gradientes altitudinales ......................................................................... 16 2.3. Definición de términos básicos ....................................................................... 17 2.3.1. Tamaño de semillas ............................................................................... 17 2.3.2. Gradientes altitudinales ......................................................................... 18 2.3.3. Comportamiento germinativo ............................................................... 18 2.3.4. Comportamiento vegetativo .................................................................. 18 III. MATERIALES Y MÉTODOS ................................................................................ 19 3.1. Lugar de ejecución .......................................................................................... 19 3.1.1. Ubicación geográfica............................................................................. 19 3.1.2. Ubicación política ................................................................................. 20 3.1.3. Características climáticas ...................................................................... 22 3.2. Materiales y métodos ...................................................................................... 24 3.2.1. Materiales y equipos.............................................................................. 24 3.2.2. Instalación del vivero, siembra de cormelos y actividades pos- siembra .................................................................................................. 24 3.2.3. Metodología .......................................................................................... 29 3.3. Aspectos metodológicos ................................................................................. 36 3.3.1. Enfoque de investigación: ..................................................................... 36 3.3.2. Tipo de investigación: ........................................................................... 36 3.3.3. Nivel de investigación: .......................................................................... 36 3.3.4. Diseño de investigación: ....................................................................... 36 3.3.5. Variables de estudio .............................................................................. 36 3.3.6. Componentes en estudio........................................................................ 36 3.3.7. Tratamientos en estudio ........................................................................ 37 3.3.8. Diseño experimental .............................................................................. 38 3.3.9. Croquis experimental ............................................................................ 38 3.3.10. Esquema del Análisis Estadístico (ANVA) ....................................... 39 3.3.11. Técnicas e instrumentos de recolección de datos .............................. 39 3.3.12. Análisis estadísticos ........................................................................... 39 IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN.............................................................................. 40 4.1. Determinación de las especies del género Dracontium encontradas en las gradientes altitudinales .............................................................................. 40 4.2. Determinación del poder y energía germinativa de los cormelos del D. plowmanii con relación al tamaño de cormelos y la gradiente altitudinal ........................................................................................................................ 42 4.2.1. Poder germinativo de cormelos del del D. plowmanii .......................... 42 4.2.2. Energía germinativa de cormelos de D. plowmanii .............................. 44 4.3. Descripción del comportamiento vegetativo de los plantones del D. plowmanii con relación al tamaño de cormelos y la gradiente altitudinal ........................................................................................................................ 46 4.3.1. Comportamiento de la altura del peciolo, altura de la copa y altura total en los plantones del D. plowmanii ................................................ 46 4.3.2. Diámetro basal y superior del peciolo en los plantones del D. plowmanii .............................................................................................. 51 4.3.3. Diámetro de la copa en los plantones del D. plowmanii ....................... 54 4.3.4. Longitud de la lámina foliar, área foliar y número de segmentos lobulados en plantones del D. plowmanii.............................................. 56 4.3.5. Número hojas brotadas en los plantones del D. plowmanii .................. 59 V. CONCLUSIONES ................................................................................................... 62 VI. PROPUESTAS A FUTURO .................................................................................... 63 VII. REFERENCIAS ....................................................................................................... 64 Anexos...................................................................................................................... 70 ÍNDICE DE TABLAS Tabla Página 1. Coordenadas UTM (Datum WGS 84, UTM) de las localidades de recolección de las plantas de Jergón Sacha. .......................................................... 19 2. Ubicación política de las localidades de procedencia de recolección de cormelos de jergón sacha. ..................................................................................... 20 3. Ubicación política del vivero. ............................................................................... 20 4. Parámetros meteorológicos de temperatura, humedad ambiental y precipitación de los lugares de recolección del año 2024. .................................... 22 5. Características climáticas de temperatura, humedad y precipitación de octubre 2024 - abril 2025, al interior del vivero. ................................................... 23 6. Tratamientos de estudio......................................................................................... 37 7. Características de los órganos vegetativos de la D. croatii y D. plowmanii según (Zhu y Croat, 2004). .................................................................................... 40 8. Análisis de la varianza para el poder germinativo por la influencia en el tamaño de cormelo y la gradiente altitudinal. ....................................................... 42 9. Comparación de medias para el poder germinativo por la influencia del tamaño de cormelo y la gradiente altitudinal. ....................................................... 43 10. Análisis de la varianza para el efecto de los factores en estudio sobre la altura del peciolo (cm), altura de la copa (cm) y altura total de plantones (cm) del D. plowmanii. .......................................................................................... 47 11. Comparación de medias de los efectos principales para los factores en estudio sobre la altura del peciolo (cm), altura de la copa (cm) y altura total de plantones (cm) del D. plowmanii. ..................................................................... 48 12. Análisis de la varianza para el efecto de los factores en estudio sobre el diámetro basal del peciolo (mm) y diámetro superior del peciolo (mm) en los plantones del D. plowmanii. ............................................................................ 51 13. Comparación de medias de los efectos principales para los factores en estudio sobre el diámetro basal del peciolo (mm) y diámetro superior del peciolo (mm) en los plantones del D. plowmanii. ................................................. 52 14. Análisis de la varianza para el efecto de los factores en estudio sobre el diámetro de la copa (cm) en los plantones del D. plowmanii. ............................... 54 15. Comparación de medias de los efectos principales para los factores en estudio sobre el diámetro de la copa (cm) en los plantones del D. plowmanii. ............................................................................................................. 55 16. Análisis de la varianza para el efecto de los factores en estudio sobre longitud de lámina foliar (cm), área foliar (cm2) y número de segmentos lobulados en los plantones del D. plowmanii. ....................................................... 56 17. Comparación de medias de los efectos principales para los factores en estudio sobre longitud de lámina foliar (cm), área foliar (cm2) y número de segmentos lobulados en los plantones del D. plowmanii. ..................................... 57 18. Análisis de la varianza para el efecto de los factores en estudio sobre el número de hojas brotadas en los plantones del D. plowmanii. .............................. 59 19. Comparación de medias de los efectos simples para los factores en estudio sobre el número de hojas brotadas en los plantones del D. plowmanii. ................ 60 20. Matriz de consistencia. .......................................................................................... 71 21. Datos meteorológicos de los puntos de recolección. ............................................. 72 22. Datos meteorológicos dentro y fuera del vivero del mes de octubre. ................... 73 23. Datos meteorológicos dentro y fuera del vivero del mes de noviembre. .............. 74 24. Datos meteorológicos dentro y fuera del vivero del mes de diciembre. ............... 75 25. Datos meteorológicos dentro y fuera del vivero del mes de enero. ...................... 76 26. Datos meteorológicos dentro y fuera del vivero del mes de febrero. .................... 77 27. Datos meteorológicos dentro y fuera del vivero del mes de marzo. ..................... 78 28. Datos meteorológicos dentro y fuera del vivero del mes de abril. ........................ 79 29. Ficha de toma de datos de campo. ......................................................................... 80 30. Ficha de datos de energía germinativa. ................................................................. 81 31. Ficha de datos del comportamiento vegetativo. .................................................... 82 32. Energía y poder germinativo tratamiento uno. ...................................................... 83 33. Energía y poder germinativo tratamiento dos. ...................................................... 85 34. Energía y poder germinativo tratamiento tres ....................................................... 87 35. Energía y poder germinativo tratamiento cuatro. .................................................. 90 36. Energía y poder germinativo tratamiento cinco. ................................................... 92 37. Energía y poder germinativo tratamiento seis. ...................................................... 95 38. Energía y poder germinativo tratamiento siete...................................................... 97 39. Energía y poder germinativo tratamiento ocho. .................................................... 99 40. Energía y poder germinativo tratamiento nueve. ................................................ 102 41. Comportamiento vegetativo del tratamiento uno. ............................................... 104 ÍNDICE DE FIGURAS Figura Página 1. Partes del Dracontium. ............................................................................................ 9 2. Germinación hipogea de los cormelos de Dracontium. ........................................ 16 3. Mapa de ubicación de los puntos de recolección de cormelos. ............................. 21 4. Mapa de ubicación del vivero familiar. ................................................................. 22 5. Parámetros meteorológicos de temperatura, humedad ambiental y precipitación de los lugares de recolección del año 2024. .................................... 23 6. Parámetros hidrometeorológicos de temperatura, humedad y precipitación del interior y exterior del vivero. ........................................................................... 24 7. Croquis del vivero. ................................................................................................ 25 8. Llenado de bolsas y ordenado. .............................................................................. 26 9. Diámetro del cormo de D. plowamanii. ................................................................ 26 10. Siembra de cormelos. ............................................................................................ 28 11. Grillo en las plántulas de D. plowmanii. ............................................................... 28 12. Organigrama de las diferentes actividades ............................................................ 29 13. Evaluación de altura del peciolo. .......................................................................... 31 14. Evaluación de la altura de la copa. ........................................................................ 31 15. Evaluación de la altura total. ................................................................................. 32 16. Evaluación del diámetro basal del peciolo. ........................................................... 32 17. Evaluación del diámetro superior de peciolo. ....................................................... 33 18. Evaluación de diámetro de la copa. ....................................................................... 33 19. Evaluación de la lámina foliar. .............................................................................. 34 20. Estimación del área foliar. ..................................................................................... 34 21. Conteo de número de foliolos. .............................................................................. 35 22. Número de hojas brotadas. .................................................................................... 35 23. Tamaño de cormelos. ............................................................................................ 37 24. Croquis de la distribución de los tratamientos en la parcela experimental. .......... 38 25. Características del D. plowmanii. .......................................................................... 41 26. Poder germinativo de cormelos del D. plowmanii. ............................................... 42 27. Energía germinativa de cormelos viables de D. plowmanii. ................................. 44 28. Energía germinativa del total de cormelos sembrados de D. plowmanii. ............. 45 29. Altura del peciolo de los plantones del D. plowmanii. .......................................... 49 30. Altura de copa de los plantones del D. plowmanii. ............................................... 49 31. Altura total de los plantones del D. plowmanii. .................................................... 50 32. Diámetro basal del peciolo de los plantones del D. plowmanii. ............................ 53 33. Diámetro superior del peciolo de los plantones del D. plowmanii. ....................... 53 34. Diámetro de copa de los plantones del D. plowmanii. .......................................... 55 35. Longitud de lámina foliar de los plantones del D. plowmanii. .............................. 58 36. Área foliar de los plantones del D. plowmanii. ..................................................... 58 37. Número de hojas brotadas en los plantones del D. plowmanii. ............................. 60 38. Constancia de determinación taxonómica de las especies del género Dracontium (jergón sacha). ................................................................................. 105 39. Constancia de determinación taxonómica de las especies del género Dracontium (jergón sacha). ................................................................................. 106 40. Resultado del análisis de suelos del sustrato usado para la germinación y cría de plantones en fase vivero. ......................................................................... 107 41. Comportamiento vegetativo del D. plowmanii. ................................................... 108 42. Constancia de corrección ortográfica. ................................................................. 109 43. Construcción del vivero y camas para germinación y cría de plantones. ............ 110 44. Zarandeo de la tierra agrícola para la eliminación de impurezas. ....................... 110 45. Sustrato homogenizado con tierra agrícola, aserrín descompuesto y tierra aluvial. ................................................................................................................. 111 46. Embolsado de sustrato. ........................................................................................ 111 47. Distribución de las bolsas con sustratos en las camas de cría. ............................ 112 48. Recolección de muestras en el fundo del señor Elmer Cordova, Neyra en el Centro Poblado Nuevo Jaen, Campanilla. ....................................................... 112 49. Recolección de muestras en el fundo del señor Antero, Margarin Avila en el centro poblado Jorge Chávez, Uchiza. ............................................................ 113 50. Recolección de muestras en el fundo del señor Emiliano, Claudio Ceferino en el caserío La Merced de Locro, José Crespo y Castillo.................................. 113 51. Cormos y cormelos del gradiente altitudinal de 1 250 a 1 500 m s. n. m. .......... 114 52. Montaje de muestras en prensa botánica para su determinación de especie. ............................................................................................................................. 114 53. Muestras botánicas en proceso de secado. .......................................................... 115 54. Siembra de cormelos de acuerdo con los tratamientos preestablecidos para el estudio.............................................................................................................. 115 55. Plántula de D. plowmanii a ocho días de haber germinado. ............................... 116 56. Medición de la altura total del plantón de D. plowmanii. ................................... 116 57. Ubicación de garita con el termohigrómetro para medir la temperatura y humedad ambiental al interior del vivero. ........................................................... 117 58. Germinación y crecimiento de plántulas de D. plowmanii. ................................ 117 59. Vista panorámica de la instalación del trabajo de investigación según tratamientos. ........................................................................................................ 118 60. Presencia de grillo masticando la guía de las plántulas....................................... 118 RESUMEN El estudio tuvo como objetivo determinar la influencia del tamaño de cormelos y la gradiente altitudinal sobre el comportamiento germinativo y vegetativo del D. plowmanii en fase de vivero en Tingo María, Huánuco. Metodológicamente el estudio es de enfoque cuantitativo, tipo prospectivo, nivel explicativo y diseño cuasi-experimental. Los cormelos provinieron de plantas recolectadas del corredor biológico del río Huallaga tramo comprendido entre los ámbitos de los distritos de Campanilla departamento San Martín y Mariano Dámaso Beraún departamento Huánuco en base a tres gradientes altitudinales y tamaño de cormelos como variables independientes y el comportamiento germinativo y vegetativo como variables dependientes. Como resultado se determinaron las especies D. plowmanii y D. Croatii. El poder germinativo para la especie del D. plowmanii fue del 100 % en cormelos pequeños para las tres gradientes altitudinales, entre 90 a 95 % en cormelos de tamaño mediano y para cormelos grandes entre 80 a 95 %. La energía germinativa en cormelos viables de tamaño pequeño fueron mayores de 85 % para la gradiente altitudinal de 750 a 1 000 m s.n.m y 75 % en la gradiente altitudinal de 250 a 500. En cuanto al comportamiento vegetativo de los plantones de D. plowmanii mostró diferencias entre sobresaliendo los plantones propagados a partir de cormelos grandes proveniente de la gradiente altitudinal 1 250 a 1 500 m s. n. m. Se concluye que existe influencia del tamaño de cormelos y la gradiente altitudinal sobre el comportamiento germinativo y vegetativo del D. plowmanii en fase de vivero. Palabras claves: Cormelo, cormo, energía germinativa, poder germinativo, peciolo. ABSTRACT The objective of the study was to determine the influence of the size of the cormels and the altitudinal gradient on the germinative and vegetative behavior of D. plowmanii during the nursery phase in Tingo Maria, Huánuco, [Peru]. The methodology of the study was of a quantitative focus, of a prospective type, at an explanatory level, and of a quasi-experimental design. The cormels came from the plants that were collected from the biological corridor of the Huallaga river [from the] section between the areas of the Campanilla district in the San Martin department and Mariano Damaso Beraun in the Huánuco department, [in Peru], based on three altitudinal gradients and the size of the cormels as the independent variables, and the germinative and vegetative behavior as the dependent variables. For the results, the D. plowmanii and D. Croatii were determined. The germinative power for the D. plowmanii specie was 100 % of the small cormels for the three altitudinal gradients, between 90 and 95% for the medium sized cormels and for the large cormels it was between 80 and 95%. The germinative energy for the viable cormels of a small sizer was greater than 85% for the altitudinal gradient of 750 to 1 000 masl and 75% for the altitudinal gradient at 250 to 500. With respect to the vegetative behavior of the D. plowmanii seedlings, there were differences that stood out the among the seedlings propagated from the large cormels that came from the 1 250 to 1 500 masl altitudinal gradient. It was concluded that an influence from the cormel size and the altitudinal gradient existed on the germinative and vegetative behavior of the D. plowmanii during the nursery phase. Keywords: cormel, corm, germinative energy, germinative power, petiole 1 I. INTRODUCCIÓN A nivel mundial muchas especies no maderables de interés económico como las especies de plantas del género Dracontium están sufriendo una erosión genética dentro de las poblaciones principalmente por la deforestación de los bosques tropicales y su extracción indiscriminada de plantas sobresalientes, poniendo en riesgo su existencia en algunas regiones tropicales. Particularmente, el Perú no es ajena a esta problemática, existe evidencias que en los valles de los ríos Huallaga, Ucayali, Pachitea entre otros; es difícil encontrar estos en condiciones de su hábitat natural, está realidad antes descrita motiva a buscar sistemas de reproducción y manejo con el fin de repoblar y garantizar su aprovechamiento sostenible, por ello se hace necesario conocer el comportamiento germinativo y vegetativo del género Dracontium en vivero, y en base a estos datos iniciar métodos alternativos para su propagación por ser una especie de uso medicinal y de interés económico. También se evidencia en la región de Huánuco pocas investigaciones y como consecuencia escasa información sobre su propagación a partir de cormelos y su comportamiento vegetativo en fase de vivero. En esta perspectiva se formula la siguiente pregunta de investigación: ¿Cuál es la influencia del tamaño de cormelos y la gradiente altitudinal sobre el comportamiento germinativo y vegetativo del D. plowmanii en fase de vivero en Tingo María, Huánuco? La investigación se justifica en razón que el Dracontium pertenece a un grupo de plantas que ofrecen una alternativa económica importante en la región de Huánuco y otras regiones, donde encuentran condiciones ambientales para su crecimiento y desarrollo, en este contexto es importante y necesario generar información relacionado con el proceso de germinación y comportamiento vegetativo de plantones de Jergón Sacha como un primer paso en el proceso de domesticación y permitir su propagación y repoblamiento en diferentes sistemas; incluso el uso de suelo como bosques secundarios, purmas y sistemas agroforestales para contribuir a la disminución de la extracción de plantas que crecen en condiciones naturales en los bosques, así mismo la información que se genera a través del presente estudio es importante para quienes tengan interés en ello; principalmente, con fines académicos para los estudiantes y docentes; así como para técnicos, investigadores, agricultores y sobre todo para quienes estén interesados en la propagación del género Dracontium por sus bondades medicinales. Además, en base a los resultados y conclusiones de la investigación, permite dar paso a otras investigaciones. Tomando en consideración la formulación del problema de investigación se plantea la siguiente hipótesis: El tamaño de cormelos y la gradiente altitudinal influye de manera 2 significativa en el comportamiento germinativo y vegetativo del D. plowmanii en fase de vivero en Tingo María, Huánuco. Objetivo general - Determinar la influencia del tamaño de cormelos y la gradiente altitudinal sobre el comportamiento germinativo y vegetativo del D. plowmanii en fase de vivero en Tingo María, Huánuco. Objetivos específicos - Determinar las especies del género Dracontium encontradas en las gradientes altitudinales. - Determinar el poder y energía germinativa de los cormelos del D. plowmanii con relación al tamaño de cormelos y la gradiente altitudinal en fase de vivero en Tingo María, Huánuco. - Describir el comportamiento vegetativo de los plantones del D. plowmanii con relación al tamaño de cormelos y la gradiente altitudinal en fase de vivero en Tingo María, Huánuco. 3 II. REVISIÓN DE LITERATURA 2.1. Antecedentes 2.1.1. A nivel internacional Según Brenes (2015), en su investigación realizada con el objetivo de investigar la germinación de cormelos plantados de Dracontium gigas en condiciones controladas, San Ramón, Costa Rica, para ello metodológicamente las muestras fueron recolectadas en la zona de vida de bosque pluvial Premontano con una precipitación anual acumulada de 3 500 mm y temperatura media de 21,0 °C. Se sembraron en potes de plástico distribuidos aleatoriamente y luego establecidos en campo definitivo. Se evaluaron durante cuatro años registrándose variables del diámetro basal del pecíolo, altura y el ancho de las láminas de las hojas. Como resultado se inició la germinación después de seis meses de plantado, alcanzando al término de proceso de germinación el 100 %, así las plantas en el primer año midieron entre 13 hasta 85 cm de altura, un diámetro de la base del pecíolo de 0,8 a 5,5 cm, en el siguiente año fue de 23 hasta 123 cm para la altura y desde 1,5 hasta 6,5 cm para el diámetro y al tercer año midieron entre 44 hasta 157 cm respecto a su altura y desde 2,11hasta 7,55 cm. La media para el crecimiento por día de los pecíolos es 11,2 cm, llegando a crecer hasta los 20 cm por día. Concluyó que D. gigas es potencialmente apto para que se plante bajo condiciones de vivero y ser posible su propagación con facilidad en condiciones controladas. Según Patiño et al. (2011), en su investigación tuvieron como objetivo la determinación del efecto promotor empleando ácido giberélico, agua de coco, escarificación mecánica y estratificación fría sobre la germinación de cormelos de Dracontium grayumianum. Metodológicamente los cormelos se obtuvieron de distintas poblaciones de tamaño pequeño y se encontraban aisladas distribuidos en la margen del río Calima, en el corregimiento La Colonia en el Bajo Calima, para el nivel de germinación se sembraron cuatro cormelos por bolsa. En el experimento se utilizó un diseño en bloques aleatorio, donde se aplicaron distintos tratamientos que promueven la germinación en condición natural. Como resultados, a los 13 días de sembrado, el grupo control alcanzó 25,0 % de germinación, el tratamiento de inmersión en agua de coco obtuvo 83,25 % y cuando se sometió a inmersión en ácido giberélico fue del 75,00 %; luego, pasado los 34 días de la siembra la germinación se observó en el 100 % al utilizar agua de coco, 83,25 % en ácido giberélico y 41,75% el tratamiento control. Estos niveles de germinación se mantuvieron constantes hasta el día 89 después de la siembra de cormelos. Nurjannah et al. (2021), en su investigación tuvieron como objetivo obtener los mejores medios de cultivo para viveros de Amorphophallus muelleri (porang) a 4 partir de varios tipos de bulbillos. Metodológicamente tuvieron los siguientes factores de estudio porcentaje de germinación, longitud del pecíolo, altura del tallo y número de hojas. El método empleado fue un diseño factorial de bloques aleatorizados. Como resultado, el mejor tipo de bulbillo para el cultivo es el cormelo que presenta mejores resultados que el bulbillo de rama en cuanto a tiempo de emergencia de la plúmula, longitud del pecíolo, altura del tallo y número de hojas. Mientras tanto, el mejor medio de cultivo en viveros de porang fue una mezcla de 50 % de carbón vegetal y 50 % de aserrín, que influyó en las variables de aparición de la plántula, porcentaje de germinación, longitud del pecíolo y altura del tallo. La aparición del cormelos con una mezcla de 50 % de carbón vegetal y 50 % de aserrín se relacionó con el tiempo de emergencia de las plúmulas 5,61 días, el porcentaje de brotación 86,67 %, la longitud del pecíolo 8,72 cm, la altura del total 31,11 cm y el número de hojas 7,72. Concluyeron que los cormelos del tallo fueron mejores. Bravo-Navasy y Sánchez-Romero (2022), en su investigación tuvo como objetivo investigar el comportamiento germinativo de semillas de Abies pinsapo de diferentes poblaciones, examinaron su respuesta a las condiciones de temperatura e iluminación que simulan hábitats naturales. Concluyeron que los factores ambientales estudiados y el origen de las semillas influyeron tanto en su capacidad de germinar y crecer para cada plántula. Bassel (2016), menciona que la latencia de las semillas se define clásicamente como un bloqueo intrínseco a la germinación de las semillas en condiciones óptimas (humedad, temperatura, etc. adecuadas). La latencia en las semillas es una característica adaptativa que permite a las plantas desplazarse a través del tiempo y el espacio. Mendoza-Pedroza et al. (2023), en su investigación tuvo como objetivo evaluar el efecto del tamaño de las semillas respecto a la germinación y crecimiento de la plántula del Cajanus cajan (frijol de palo) en condición de invernaderos. Metodológicamente las semillas fueron divididas en grupos de grandes y chicos considerados como tratamientos. Los tratamientos tuvieron tres repeticiones conformadas por 100 semillas cada una. Como resultado, se muestra diferencias significativas para la germinación, las velocidades de emergencia, diámetro del tallo a nivel del cuello de la raíz, altura total, cantidad de hojas, robustez, materia seca acumulada, volumen de las raíces, área foliar y el vigor de las plantas. Concluyeron que las semillas de tamaños grandes de C. cajan obtuvieron mejores porcentajes de germinación y velocidad de emergencia en comparación con las semillas chicas. Además, se observó la producción de plántulas que sobresalen en expresiones como su altura, diámetro del cuello de la raíz, cantidad de hojas, materia seca total acumulada y por componente morfológico, área foliar, volumen de las raíces, así como el índice de vigor de las plantas. 5 Souza y Fagundesque (2014), en su investigación tuvieron como objetivo evaluar la relación del tamaño de las semillas, la germinación y el rendimiento de cada plántula de Copaifera langsdorffii. Metodológicamente seleccionaron 30 individuos de C. langsdorffii y se recolectaron 300 semillas al azar en el dosel de la planta. Todas las semillas se pesaron y se colocó en una bandeja de germinación. Evaluaron la germinabilidad y el desarrollo inicial de cada plántula, se monitorearon diariamente hasta la caída de los cotiledones. Como resultados obtuvieron que la semilla pequeña tiene mejor capacidad de germinar y germinan más rápido que las semillas grandes. Sin embargo, las plántulas derivadas de semillas grandes tienen tiempos de desarrollo más largos, lo que resulta en plántulas más vigorosas que las plántulas provenientes de semillas pequeñas destinan proporcionalmente mayor cantidad de recursos a las raíces en comparación con las semillas más grandes. Concluyeron que la semilla pequeña tiene mejor capacidad de germinar y más rápido favorece la colonización de hábitats transitorios. Sin embargo, las semillas más grandes producen plántulas más vigorosas, lo que favorece su establecimiento en hábitats más estables. Por lo tanto, argumentan que la elevada heterogeneidad respecto a su tamaño de las semillas para C. langsdorffii favorece su amplia distribución geográfica. Yanlong et al. (2007), publicaron un artículo cuyo fin fue estudiar la influencia de diferentes luces y tamaños de semillas en la germinación y el crecimiento de las plántulas en un entorno natural en Ligularia virgaurea, una hierba clonal nativa de la meseta Qinghai-Tíbet. La investigación fue realizada en los ambientes de la Estación de Investigación Científica del Ecosistema de Praderas Alpinas de la Universidad de Lanzhou en Gannan, Provincia de Gansu, China. Se realizaron seis tratamientos, respectivamente: semillas grandes sin sombra, semillas pequeñas sin sombra, semillas grandes con un 75 % de sombra, semillas pequeñas con un 75% de sombra, semillas grandes con un 50% de sombra y semillas pequeñas con un 50% de sombra. Como resultado, tanto las semillas grandes como las pequeñas mostraron niveles significativamente reducidos de germinación en condiciones de sombra. La magnitud de este efecto fue mayor para las semillas pequeñas que para las grandes. Las plántulas de semillas pequeñas tienen tasas de crecimiento relativo más altas que las plántulas de semillas grandes en condiciones de sombra y sin sombra. En contraste, no hubo diferencia significativa en la relación de área foliar entre plántulas de semillas pequeñas y grandes. Concluyeron que el tamaño de la semilla afecta más fuertemente la tasa de germinación y la capacidad de supervivencia de las plántulas, las semillas grandes poseen mayor capacidad de supervivencia que las semillas pequeñas. 6 Kandasamy et al. (2020), el presente estudio estableció como una investigación preliminar la relación del contenido de nutrientes en las semillas con la composición del microbioma con el vigor de las plántulas mediante la categorización de tres híbridos de maíz comunes, en función a su tamaño. Metodológicamente se registraron los pesos individuales y el promedio de las semillas para cada categoría. Se sembraron cinco macetas repetidas de 20 cm de diámetro con cinco semillas en cada categoría a una profundidad uniforme, utilizando las plantas se cultivaron en un ciclo día-noche de 16/8 h a 20-25 °C con una humedad relativa del 45-55 %. Los resultados indicaron claramente que las dimensiones de las semillas poseen un impacto principal en el crecimiento de la planta y su microbioma, lo que da como resultado plántulas con diferente vigor, microbiomas y rendimiento de las plantas. Concluyendo que las relaciones de los tamaños de las semillas, el vigor, la composición nutricional y los perfiles microbianos de las semillas de tres variedades híbridas canadienses comunes. Se encontró que las semillas más grandes tuvieron mayor vigor de plántula, altura de planta y rendimiento en dos de las tres variedades probadas. Hernández-Ramos et al. (2022), en su artículo titulado la copa como indicador fotosintético relevante en el manejo forestal de bosques templados, donde menciona que la dinámica y arquitectura de la copa sobre la edad en un bosque templado es un fenómeno complejo que varían en función de las especies, climas de cada región, condición de los suelos, grado de humedad y rasgos del lugar donde suele desarrollarse. Sin embargo, comprender este aspecto suele ser vital para poder asignarle manejo silvícola porque se determina la tasa fotosintética, velocidad de asimilar el CO2, dinamismo de su crecimiento y la productividad en las especies o ecosistemas. 2.1.2. A nivel nacional Según Peréz (2022), realizó un estudio con el objetivo de conocer el efecto de sustrato de Biochar vegetal sobre la germinación de Dracontium loretense (kamatonki) llevado a cabo en el Sector Yacupato de la provincia Coronel Portillo del departamento Ucayali. Metodológicamente tuvo como factores a estudiar a: la germinación del cormelo, peso, ancho y largo de cormelos, altura de los brotes, diámetro basal, días para el brotamiento, número de brote de cada cormelo. Empleó un diseño completo al azar distribuido en cuatro tratamientos, cuatro repeticiones y 18 unidades experimentales. Como resultado la germinación del cormelo emergió a 58 días y con un solo brote por cada cormelo sembrado. No hubo diferencias estadísticas en la altura con una media de 4,68 mm bajo la aplicación de 400 g del biochar vegetal, seguidamente con una media de 2,54 mm con 200 g de biochar vegetal y con una media de 0,71 mm para el testigo. Con respecto al diámetro basal del peciolo, la media fue de 1,53 7 mm con 400 g de biochar vegetal valor superior con respecto al testigo que presentó una media de 0,97 mm, aunque, numéricamente se observó diferencias. Concluyó que el uso de distintas dosis del biochar vegetal como parte del sustrato al propagar cormelos de D. loretense no generan respuestas superiores. 2.1.3. A nivel local Según Cacha (2021), investigó la propagación de D. loretense a partir de fracciones del cormo sometido a dosis de enraizante en Tingo María, Huánuco. Metodológicamente las muestras recolectadas provinieron de la cuidad de Tocache las mismas que fueron determinadas como D. loretense. Consideró diferentes tamaños de corte del cormo: 3, 5 y 10 cm y la dosis del enraizante Root-Hor: 0,25, 0,50 y 1,0 %. Lo distribuyó en un diseño completo al azar. Como resultado obtuvo un mayor número de brotes con cormos de 5 cm que emitieron tres brotes, las partes del cormo con 3 y 10 cm emitieron 2 brotes. Con respecto a la altura del peciolo fue mayor con 19,14 cm en el corte de 10 cm, 14,25 y 10,60 cm de altura de peciolo en el corte de 5 y 3 cm respectivamente. El mayor diámetro de peciolo con 5,75 mm se registrado al combinar partes del cormo que medían 3 cm y sometidas a Root-Hor al 0,50 %, mientras que el diámetro más ajo fue observado en partes del cormo cortados a 3 cm pero que no se les aplicó dosis del enraizante. Moreno (2023), en su estudio cuyo objetivo fue caracterizar fitoquímicamente los fenoles totales y evaluar su capacidad antioxidante de cada extracto de Dracontium loretense (sacha jergón), Pouteria caimito (caimito) y Laportea aestuans (ishanga). Metodológicamente la planta de D. loretense fue obtenida de un fundo agrícola en el caserío Nuevo Portugal del distrito de Uchiza en la provincia de Tocache del departamento de San Martín. Mixan (2022), en su investigación tuvo como objetivo la identificación de los metabolitos secundarios contenidos en las muestras de extractos metanólicos de los cormos de D. spruceanum mediante el uso del GC-MS. Las muestras fueron colectadas del Bosque Reservado de la Universidad Nacional Agraria de la Selva (BRUNAS). Su determinación de la especie fue realizada por el Dr. Edilberto Chuquilín Bustamante, personal a cargo de la jefatura del Jardín Botánico-UNAS como D. spruceanum. Bocanegra (2007), se propuso como objetivo conocer la composición fitoquímica en extractos del cormo de D. loretense y las variaciones en base a la ubicación geográfica donde fueron colectadas las plantas. Las muestras vegetales se colectaron en tres zonas ecológicas de la selva peruana, dos de ellas de la provincia de Lamas del Valle del Mishquiyacu; distrito Pamashto y distrito Barranquita; la tercera provincia de San Martín; 8 sector Cerro Escalera. Lo cual se determinó como D. loretense por parte del biólogo César Ricardo Valles Panduro que labora en la Facu1tad de Ciencias Agrarias de la Universidad Nacional de San Martín. Barreto y Vilchez (2021), tuvieron como objetivo la caracterización de cada componente en el extracto hidroalcohólico obtenido de la hoja y tallo de D. spruceanum y mediante reacciones químicas para realizar su interpretación química analítica de ellas. La muestra fue recolectada de la cuidad de Juanjuí, departamento de San Martín. Se determinó como D. spruceanum en el Herbario de San Marcos (USM) del Museo de Historia Natural. 2.2. Bases teóricos 2.2.1. Género Dracontium 2.2.1.1. Clasificación taxonómica Zhu y Croat (2004), clasificó taxonómicamente de la siguiente forma: División : Angiospermae Clase : Monocotiledónea Orden : Alismatales Familia : Araceae Subfamilia : Lasioideae Género : Dracontium 2.2.1.2. Morfología del género Dracontium Como lo categoriza y define (Zhu y Croat, 2004). - Cormos Las dimensiones, los pesos y su morfología de cada cormo varía de una temporada a otra. Las disminuciones de los cormos están asociados al cambio en su profundidad vertical más que en el diámetro horizontal del cormo, dado que las dimensiones del cormo varían según la estación. Este hecho de estar debajo del suelo permite su protección contra los herbívoros que se alimentan de cormos, como los agutíes y los pecaríes. Sin embargo, las perturbaciones de estos mismos animales son las encargadas de distribuir los cormos. - Cormelos Los cormelos nacen encima de los cormos, rara vez al lado de los cormos de forma irregular y a menudo mezclado con las raíces. Los cormelos permiten reproducirse vegetativamente. Por lo general, están inactivos y se activan sólo después de una perturbación. Cuando un cormelo se perturba, comienzan a cambiar de forma, acortándose de manera algo irregular y producen sus propios brotes y raíces. 9 - Raíces Las raíces primarias del género Dracontium emergen del cormo y crecen hacia los lados en diferentes direcciones, rodeando completamente el cormo. Las raíces secundarias emiten en la parte apical de las raíces primarias. El sistema de raíces es fuerte y a menudo contráctil; no solo cumplen funciones de absorber agua y nutrientes, sino que también sirve como soporte para la planta. - Peciolo Los pecíolos de Dracontium son gruesos y aerenquimatosos, frecuentemente de más de 2 m de largo. La superficie exterior suele ser muy variada, de color verde oscuro o violáceo, a veces teñida de marrón, moteada con áreas de color verde pálido o crema que adquieren un patrón reptil Bothrops atrox (jergón). Así mismo las áreas moteadas a menudo aparecen como pinceladas ascendentes, que se originan en protuberancias. La textura de la superficie del pecíolo es variable entre especies, desde texturas suaves hasta muy plagadas de protuberancias. Estos últimos suelen ir acompañados de proyecciones irregulares, alargadas horizontalmente, que bordean dos áreas de diferente color y a veces, también de proyecciones espinosas de hasta 2 mm de largo. La vaina del pecíolo es convoluta, formando un espacio cerrado en el centro a través del cual se inicia la inflorescencia u hoja. Fuente propio Figura 1. Partes del Dracontium. Lámina foliar Cormo Inflorescencia Raíz Peciolo Pedúnculo Cormelos 10 2.2.1.3. Distribución del género Dracontium Las especies del género Dracontium se encuentran distribuidos en América tropical como Bolivia, Brasil (Amazonia, Centro Oeste), Costa Rica, Colombia, México, Paraguay, Ecuador, Guyana, Guayana Francesa, Panamá, Nicaragua, Perú, Puerto Rico y Venezuela (Zhu y Croat, 2004). 2.2.1.4. Especies del género Dracontium Según la clasificación de Zhu y Croat (2004). - Dracontium amazonense La floración se produce solo durante el mes de marzo, mientras los frutos maduros son observados en diciembre. El D. amazonense se conoce en la Amazonia de Venezuela (Bolı́var), Brasil (Amazonas y Pará) y Perú (Loreto). Se desarrolla en bosques húmedos tropicales (bh-T). Florece regularmente. - Dracontium peruvianum La floración de esta especie se registra desde abril hasta noviembre, mientras que los frutos alcanzan su madurez entre julio hasta marzo, siendo más resaltante en el mes de diciembre. El D. peruvianum se encuentra sólo en la Amazonía de Perú y Brasil - Dracontium spreceanum Florece durante todo el año y los frutos maduros también todo el año. Se extiende desde la llanura costera caribeña de Costa Rica (Limón) hasta Colombia y Ecuador (a ambos lados de los Andes) y la Amazonía de Ecuador, Perú, Venezuela y Brasil. Es la especie morfológicamente más distribuida del género Dracontium. Se caracteriza por su espata generalmente erecta o ligeramente arqueada, que se diferencia en un tubo proximal y una lámina distal. - Dracontium plowmanii Zhu y Croat (2004), clasificó taxonómicamente de la siguiente forma: División : Angiospermae Clase : Monocotiledónea Orden : Alismatales Familia : Araceae Subfamilia : Lasioideae Género : Dracontium Especie : D. plowmanii G.H. Zhu & Croat 11 Cormo hemisférico, de 10 a 20 cm de diámetro y 6 a 9 cm para el grosor, plano en el lado superior, redondeado y de color blanco a marrón en la parte inferior, de 5 a 18 cm por debajo del nivel del suelo, cormelos escasos, redondeados o cilíndricamente alargados, nacen alrededor de la periferia del cormo, raíces blancas y fuertes. Hojas solitarias; pecíolos de 1 a 2 m de largo por encima del suelo, de 3 a 4 cm de dimensión diametral en el punto medio, de color verde parduzco, moteados en contraste con manchas de color blanco sucio o verde pálido, formando un patrón reptiliano, lisos o generalmente con proyecciones espinosas; lámina juvenil sagitada o sagitadamente lobulada; láminas maduras extendidas horizontalmente de 1 a 1,2 m de diámetro, inflorescencia solitaria, que aparece antes de la hoja nueva; pedúnculo de 30 a 70 cm de largo por encima del suelo, color similar al pecíolo pero de color más oscuro, verde parduzco, liso; espata de 10 a 28 cm de largo y el ancho de 1 a 6 cm. Florece de junio a agosto, a veces en febrero. Los frutos maduros se recolectan en enero y febrero. La especie de D. plowmanii es endémica de Perú y se extiende desde Junín, pasando por Cuzco, hasta la zona de Tambopata en Madre de Dios. Suele encontrarse en bosques húmedos Tropicales (bh-T) y bosques húmedos premontanos (bh-P) a altitudes de 200 a 720 m s. n. m. - Dracontium croati El cormo es hemisférico, de 8 a 11 cm de diámetro y 6,5 cm para su grosor, plano en el lado superior, redondeado y de color blanquecino a parduzco en la parte inferior, de 4 hasta 30 cm por debajo de la superficie de los suelos; cormelos escasos, redondeados o cilíndricamente alargados, de 0,5 hasta 1,0 cm para su diámetro y desde 1,0 hasta 2,3 cm para su longitud, que nacen alrededor de la periferia del cormo; raíces blanquecinas. Hojas solitarias; pecíolos de 1,4 a 3 m de longitud sobre el suelo, de 2 a 4,5 cm de diámetro en el punto medio, verde oscuro o verde parduzco, contrastantemente moteado con manchas blanco sucio o verde pálido y formando un patrón reptiliano, generalmente liso en su mitad superior y con protuberancias irregulares en su mitad inferior; lámina juvenil sagitada o sagitadamente lobulada; láminas maduras extendidas horizontalmente de 1 a 1,5 m de diámetro, florece de noviembre a febrero, los frutos maduros de febrero a julio. A la especie D. croatii se le suele encontrar únicamente en las laderas occidentales de los Andes del país ecuatoriano; también pueden encontrárselas en las zonas adyacentes del país colombiano. Se caracterizan porque suele encontrarse en bosques húmedos premontanos (bh-P) y bosques húmedos montanos tropicales (bh-MT), a altitudes de 450 a 1 000 m s.n.m. 12 2.2.1.5. Usos del género Dracontium Como resultado de un estudio realizado en centros poblados de comunidades nativas en la Amazonía, se reporta su uso en tratar enfermedades o síntomas, como epilepsia, temblor de manos, picadura de mantarraya, diarrea, sida, cáncer, hernia, herpes, acné, extracción de gusano de la piel y ser usado también por sus efectos afrodisíacos (Corporación para el Desarrollo Sostenible del Sur de la Amazonia [CORPOAMAZONIA], 2012). Así mismo la Agencia Peruana de Noticias (ANDINA, 2023), menciona que el D. spruceanum presentan propiedades medicinales en donde se trabajó con la comunidad Awajún resaltando en que se trata distintas enfermedades como hepatitis, diabetes, algunos tipos de cáncer y mordedura de serpiente. Igualmente, para el último caso Vilchez (2017) reportó como resultado de su estudio realizado en tres comunidades nativas Asháninkas: Bajo Quimiriki, Shankivironi y Churingaveni, donde los pobladores usan al D. spruceanum con fines de neutralizar el efecto del veneno de Bothrops atrox, aplicando las raíces molidas de manera directa sobre la picadura, acompañado de bebidas donde se diluye con agua hervida el cormo de esta planta. 2.2.1.6. Propagación Es posible sembrar durante cualquier mes del año, de preferencia en cuando se registra poca precipitación. Es recomendable que se siembre al distanciamiento de 1,0 x 1,0 m en campo definitivo. Las hojas de las plantas pueden ser atacados por hongo, pulgon, chinche, sanguijuela, milpiés, Atta sp. (curuhuince), diabrótica (coleóptera), también suelen sufrir daños por los grillos. Se propaga asexualmente empleando el cormo y/o cormelo. Suelen emitir su brote desde los 1,5 hasta 6,0 meses posteriores a ser sembrados (Collantes et al., 2011). 2.2.1.7. Hábitat - Clima Se las encuentra creciendo en medios húmedos donde la temperatura media anual varía desde 18 a 24 °C y las lluvias acumuladas en el año sean desde 1 200 hasta 3 300 mm (Collantes et al., 2011). - Suelos Las plantas suelen proliferar en distintos suelos como arenosos, francos y franco arcillosos, donde el pH es ácido y el nivel de materia orgánica es elevada. En Pucallpa se les encuentra en suelo bien drenados, sombreado y húmedo; se adaptan a distintos tipos de suelos como son los ultisoles (altura) y entisoles conocidos como aluviales (Collantes et al., 2011). 13 - Biotopo de las poblaciones naturales Son observadas en el estrato inferior de los bosques secundarios (purma cerrada y joven) o primarios, su población no es densa y se las encuentra como planta individual aislada. Además, se las encuentra en chacras nuevas, cercanos o lejanos a los cuerpos de agua. Progresa en suelo de altura que no inunda, sin embargo, resiste a inundaciones; prolifera en medios con sombra. Se las encuentra acompañada de especies como: Aguaje, Amasisa, Bijao, Carahuasca, Caña brava, Castaña, Espintana, Cetico, Huacapú, Pona, Umarí, Yacushapana, Yarina, Ubos, Lupuna, Uña de gato, Retama y entre otros (Taylor, 1999). 2.2.2. Germinación de semillas La germinación es cuando desarrollan las estructuras esenciales que provienen del embrión, y que manifiestan la capacidad de la semilla para producir una planta normal bajo condiciones favorables. Asimismo, la germinación es la aparición y desarrollo de la plántula hasta una etapa donde el aspecto de sus estructuras esenciales indica si es o no capaz de desarrollarse más en una planta satisfactoria bajo las condiciones favorables en los campos (Chacón, 2018). La calidad fisiológica de las semillas abarca la suma de cada una de las propiedades o características, las cuales determinan el nivel potencial del comportamiento de cada semilla y el establecimiento del cultivo. Cada componente de la calidad de la semilla incluye el aspecto genético, físico, fisiológico y sanitario como insectos y microorganismos (Velázquez, 2014). 2.2.3. Factores que afectan la germinación de semillas vegetales 2.2.3.1. Factores externos - Temperatura La semilla germina a temperatura cálida, desde 20 a 25 °C. Muchas semillas suelen necesitar unos 24 °C para que germinen (Ashworth, 2002). En un medio los suelos húmedos actúan como amortiguadores naturales de cambios rápidos de la temperatura, porque la temperatura del agua tarda más que la temperatura del aire. Dentro del invernadero, se cierra cada pared en las noches con fines de que se retenga el calor o se abren en el día con fines de que circule el aire para que ayude a moderar la temperatura extrema (Educational Concerns for Hunger Organization [ECHO], 2023). Viene a ser un factor primordial cuando una semilla va germinar, porque va influir en enzimas reguladoras de la velocidad de reacción bioquímica ocurrida en las semillas luego de rehidratarse. Las actividades de las enzimas ocurren entre un mínimo y máximo de temperatura, por tal razón existe un intermedio óptimo. Por ello, la semilla solo 14 germina en un margen de temperatura, aunque los otros factores sean favorables. La semilla de especies tropicales por lo general germina más a temperaturas por encima de los 25 ºC. (Ramón y Mendoza, 2002). - Agua Absorber agua es muy importante y se realiza durante la germinación; porque para que la semilla recupere su metabolismo es necesario la rehidratación de sus tejidos. Con menos del 40 o 60 % de agua en la semilla (con base en peso fresco), no se efectúa la germinación (Valla, 2004). Absorber agua suele ser la primera actividad y de mucha importancia para que germine una semilla, debido a que las semillas recuperan su metabolismo siendo necesarias las rehidrataciones de sus tejidos. El agua entra al interior de las semillas por diferencias del potencial hídrico de las semillas con el medio en la que se encuentra. Bajo situaciones normales, dicho potencial hídrico es bajo cuando la semilla está seca en el medio exterior. Razón por la cual, hasta la que emerge su radícula, el agua llega al embrión por medio de la pared celular que se encuentra en la cubierta seminal, siempre a favor de un gradiente de potencial hídrico (Ramón y Mendoza, 2002). - Textura y humedad del suelo La semilla necesita condiciones de humedad con la cual puede ocurrir su germinación. La textura de los suelos, así como el nivel de materia orgánica tiene influencia en su capacidad de retener agua del suelo y que germine la semilla. El mal contacto de las semillas con los suelos en medios edáficos arenosos podría ocasionar mala humedad necesaria para que germine la semilla (ECHO, 2023). - pH del suelo El nivel de pH adecuado de los suelos considerados en el sembrío de los cultivos suele variar de acuerdo a las especies. Un pH adecuado de los suelos para muchos cultivos suele ser casi neutro con un valor alrededor de 7,0, que son suelos ligeramente ácidos con 6,5 y suelos ligeramente alcalinos con un valor de 7,5 (Alzugaray et al., 2007). - Luz Las semillas que no presentan dormancia germinan al recibir las condiciones adecuadas como la temperatura, agua y oxígeno adecuado. En cambio, aquellas con dormancia innata requieren un estímulo adicional para iniciar la germinación. La luz suele estimular que germinen ciertos cultivos como eneldo, lechuga, cebolla, apio, entre otros. Aunque muchos cultivos necesitan ausencia de luz para que germinen, pero suelen necesitar luz sus brotes para alcanzar el crecimiento adecuado luego de germinar. Cuando una planta es 15 sembrada en un medio de poca luz, suele alargarse y ser delgada siendo individuos altos y con escasas hojas debido a que suelen buscar luz (ECHO, 2023). - Oxígeno Un embrión dentro de la semilla se encuentra vivo y tiene la capacidad de respirar, usa oxígeno luego suele liberar el dióxido de carbono mientras que el depósito de nutriente es convertido en energía. Al almacenar fresco y seco, la semilla respira de manera mínima para preservarla. Al ser expuesta al oxígeno, con temperatura cálida del aire y humedad, las semillas empezarán a respirar con mayor rapidez. Por lo general, el espacio poroso de los suelos contiene aire que permite transferir gases y absorber oxígeno a cada semilla y la vida de los suelos (ECHO, 2023). 2.2.3.2. Factores internos - Madurez de las semillas Cuando una semilla alcanza su desarrollo completo tanto morfológicamente y fisiológicamente. Su madurez morfológica registra al presentar cada estructura completa de la semilla, culminando cuando su embrión alcanzó el desarrollo máximo. La madurez lo logran al encontrarse en la misma planta; pero, hay especies que suelen diseminar sus semillas previo a que alcance su desarrollo completo (Alzugaray et al., 2007). - Viabilidad de las semillas La viabilidad de la semilla refiere al período de tiempo que transcurre para que conserve la capacidad de germinar. Es un período variable y depende del tipo de semilla y su condición de almacenamiento. La semilla pierde su capacidad de germinar, por lo general debido a la edad y más aún cuando se conserve defectuosamente. a viabilidad para un grupo de semillas se refiere a la capacidad de efectuar el proceso germinativo y obtienen plántulas normales en normales parámetros ambientales (Pérez y Pita, 2001). La viabilidad pudiera variar entre especies ya que ciertos son viables pocos meses y hay especies que perduran por varias décadas (Horturba, 2016). Una semilla germinada es cuando se genera una planta adulta con capacidad de reproducirse; dicho de otra manera, podrá producir más cantidad de semillas (Rodriguez et al., 2008). 2.2.4. Tipos de germinación 2.2.4.1. Epigeo Los cotiledones emergen del suelo debido a un crecimiento de los hipocótilo (porción comprendida entre la radícula y el punto de inserción de los cotiledones). La posición del nódulo cotiledonario durante el proceso de germinación, indica si el nodo se encuentra por encima o por debajo del nivel superficial del suelo o sustrato donde se sembró la 16 semilla, una vez emergida las plántulas. Epi tiene el significado de arriba caso contrario que hipo cuyo significado es abajo. La ubicación del nódulo cotiledonario posterior a que emerge una plántula, suele ser una característica empleada como primer criterio en la diferenciación de las especies de vegetales. El epicótilo es la región embrionaria del brote que se localiza por encima del punto de la unión de los cotiledones y el hipocótilo de la región embrionaria se encuentra debajo del punto de unión del cotiledón y suele extenderse hacia abajo prolongándose hasta donde se observa el comienzo del sistema de raíces (Alzugaray et al., 2007). 2.2.4.2. Hipogeo Los cotiledones permanecen enterrados, únicamente la plúmula atraviesa el suelo. En este tipo de emergencia de la plántula, el meristemo apical en la punta del epicotíleo presenta mayor actividad que el hipocótilo. Esta división celular y elongación suele empujar al epicótilo por encima de la superficie del suelo mientras que los cotiledones y todo el hipocótilo suelen permanecer por debajo de la superficie del suelo. Una plántula que presente el nódulo cotiledonario por debajo del suelo se le denomina germinación hipógeo. Un claro ejemplo viene a ser la germinación del Dracontium que exhibe germinación hipógea (Alzugaray et al., 2007). Figura 2. Germinación hipogea de los cormelos de Dracontium. 2.2.5. Gradientes altitudinales Los gradientes altitudinales influyen en las condiciones de clima, en las propiedades físicas, biológicas y químicas del suelo, en la estructura poblacional y en la 2 cm 5 cm 10 cm 17 fisiología de las especies. (Asner et al., 2017), así mismo en diversos factores del medio ambiente que determinan los límites de las gradientes, como respuestas directas de la temperatura y la precipitación hasta las características indirectas de cada lugar, así como las interacciones de las especies. La zonificación es compleja debido a las interacciones y a la superposición de la distribución de las especies. (Shipley y Keddy, 1987). Los factores que varían en la gradiente altitudinales: - Abióticos y bióticos La variación en los gradientes impacta significativamente en los componentes bióticos y abióticos, que está estrechamente relacionados con los procesos progresivos en curso (Gupta et al., 2019). - Vegetación La vegetación a lo largo de la altitud revela que la temperatura, el viento, la radiación UV, la disponibilidad de nutrientes y la precipitación son los principales impulsores. Debido a diferentes condiciones climáticas, propiedades fisicoquímicas del suelo y la vegetación también influyen significativamente, lo que se relaciona con niveles bajos de nitrificación, pH y carbono orgánico (Kewlani et al., 2021). - Temperatura Un factor importante disminuye al incrementar la elevación es la temperatura; los gradientes altitudinales actúan como termoclinas para desencadenar condiciones ambientales a largo plazo. Se han observado plantas con mayor flexibilidad fenotípica en elevaciones más altas con mayor frecuencia. En reacción a las fluctuaciones climáticas, las plantas ajustan características fisiológicas, reproductivas y físicas críticas (Fatima et al., 2022). - Suelos El cambio altitudinal en las características del suelo impactan significativamente la composición de las comunidades vegetales. Las calidades del suelo pueden verse afectadas por cambios en la vegetación a lo largo de un gradiente altitudinal. Otras variables, incluyendo la temperatura del suelo, la exposición de la pendiente, la vegetación y la altitud, también pueden impactar las calidades del suelo (Trujillo-González et al., 2022). 2.3. Definición de términos básicos 2.3.1. Tamaño de semillas El tamaño de la semilla es considerado como uno de los rasgos vegetales de mayor relevancia ecológica que esta referido a sus dimensiones, las que varían en tamaño y forma dentro de una especie y entre especies. (Verde, 2014). https://www.frontiersin.org/journals/forests-and-global-change/articles/10.3389/ffgc.2023.1181299/full#B47 18 2.3.2. Gradientes altitudinales Las gradientes altitudinales son las distancias verticales de un punto de la tierra respecto al nivel del mar, que se identifica habitualmente con el acrónimo metros sobre el nivel del mar (m s. n. m.) (García -Benadi y Del Rio, 2013). 2.3.3. Comportamiento germinativo Bewley et al. (2013), denominan a la germinación de las semillas como el proceso fisiológico que finaliza con la emergencia del embrión a partir de las cubiertas envolventes como el endospermo, perispermo, la testa o pericarpio. 2.3.3.1. Energía germinativa Expresada como el porcentaje o número de semillas de una muestra, las cuales germinan en mayor cantidad en un periodo (periodo de energía) o tiempo determinado durante el proceso de germinación o porcentajes de semillas de una muestra las cuales germinan hasta el momento de máxima germinación, entendido como la medición en la cual se alcanza un mayor número o porcentaje de semillas germinadas. Es una medida de la velocidad de la germinación y por ello equivale al vigor de la semilla (Benito, 2012). 2.3.3.2. Poder germinativo Indica la capacidad intrínseca de cada semilla individual para responder al ambiente con la que se la enfrenta y empieza el proceso biológico conocido como “germinación”. Se determina mediante el porcentaje de semillas que germinó y desarrolló plántulas normales, cuando se colocó en condiciones ambientales óptimas para su crecimiento (Benito, 2012). 2.3.4. Comportamiento vegetativo El comportamiento vegetativo se define como la respuesta fenotípica a un estímulo, lo cual, es rápido y generalmente reversible, considerando esta definición se puede catalogar como comportamiento a un número complejo de expresiones que presentan las plantas ante distintos estímulos ambientales y entre individuos de la misma especie (Fernández, 2020). 19 III. MATERIALES Y MÉTODOS 3.1. Lugar de ejecución 3.1.1. Ubicación geográfica Para la presente investigación se tomó como referencia el corredor biológico del río Huallaga, tramo comprendido entre los ámbitos de los distritos de Campanilla departamento San Martín y Mariano Dámaso Beraún departamento de Huánuco en base a las gradientes altitudinales consideradas para el presente estudio de donde procedió el material biológico (Tabla 1). Tabla 1. Coordenadas UTM (Datum WGS 84, UTM) de las localidades de recolección de las plantas de Jergón Sacha. N° de muestra Gradiente altitudinal (m s. n. m.) Localidad de procedencia Coordenadas UTM Altitud (m s. n. m.) Este Norte 1 250 a 500 Jorge Chávez ** 346709 9068259 485 2 250 a 500 Nueva Libertad * 328725 9089810 489 3 250 a 500 Nuevo Jaen ** 315513 9156221 497 1 750 a 1 000 La Merced de Locro * 381441 8988016 760 2 750 a 1 000 Julio Cesar Tello * 379427 8988809 775 3 750 a 1 000 Chontayacu * 377741 8990405 780 1 1 250 a 1 500 San Pedro de Pacchaj ** 396921 8961941 1 265 2 1 250 a 1 500 Puente Moena *** 398846 8963335 1 391 3 1 250 a 1 500 Puente Moena *** 398846 8963326 1 387 *: Caserío, **: Centro poblado, ***: Sector Con respecto a la ubicación de las camas de germinación y de cría que fueron implementados, se realizó en un vivero temporal familiar, el mismo que se ubicó en el Asentamiento Humano Brisas del Huallaga donde las coordenadas UTM (Datum WGS 84, UTM) fueron: Zona : 18 L Este : 3899661 Norte : 8970248 Altitud: 682 m s. n. m. 20 3.1.2. Ubicación política Políticamente los lugares de donde procedieron y extrajeron los cormelos para la investigación fueron de los distritos y provincias de los departamentos de Huánuco y San Martín (Tabla 2), y con respecto al vivero se ubicó en el Asentamiento Humano Brisas del Huallaga del distrito de Rupa Rupa en la Provincia de Leoncio Prado del departamento de Huánuco (Tabla 3). Tabla 2. Ubicación política de las localidades de procedencia de recolección de cormelos de jergón sacha. Muestra Localidades de procedencia Distrito Provincia Departamento M1 Jorge Chávez ** Uchiza Tocache San Martín M2 Nueva Libertad * Tocache Tocache San Martín M3 Nuevo Jaén ** Campanilla Mariscal Cáceres San Martín M4 La Merced de Locro * José Crespo y Castillo Leoncio Prado Huánuco M5 Julio Cesar Tello * José Crespo y Castillo Leoncio Prado Huánuco M6 Chontayacu * José Crespo y Castillo Leoncio Prado Huánuco M7 San Pedro de Pacchaj ** Mariano Dámaso Beraún Leoncio Prado Huánuco M8 Puente Moena *** Mariano Dámaso Beraún Leoncio Prado Huánuco M9 Puente Moena *** Mariano Dámaso Beraún Leoncio Prado Huánuco *: Caserío **: Centro poblado ***: Sector Tabla 3. Ubicación política del vivero. Ubicación Distrito Provincia Departamento AA. HH Brisas del Huallaga Rupa Rupa Leoncio Prado Huánuco 21 Figura 3. Mapa de ubicación de los puntos de recolección de cormelos. 22 Figura 4. Mapa de ubicación del vivero familiar. 3.1.3. Características climáticas Según el Servicio Nacional de Meteorología e Hidrología del Perú (SENAMHI, 2024), presenta los parámetros meteorológicos de los lugares de recolección de las plantas de Jergón Sacha (Tabla 4). Tabla 4. Parámetros meteorológicos de temperatura, humedad ambiental y precipitación de los lugares de recolección del año 2024. Estaciones meteorológicas Temperatura (°C) Humedad relativa (%) Precipitación (mm/año) Máxima Media Mínimo Campanilla - Nuevo Jaen 34,10 28,59 23,08 70,40 1 662,19 Tananta - Nueva Libertad 32,34 27,02 21,70 81,27 2 397,60 Uchiza - Jorge Chávez 29,81 24,95 20,08 84,16 3 178,20 Aucayacu - Merced de Locro, Julio Cesar Tello y Chontayacu 31,17 26,26 21,37 81,27 3 441,10 Tingo María - San Pedro de Pacchaj - Bejucal Puente Moena 31,48 26,41 21,32 80,47 3 220,50 Fuente. SENAMHI (2024). 23 Figura 5. Parámetros meteorológicos de temperatura, humedad ambiental y precipitación de los lugares de recolección del año 2024. Los parámetros meteorológicos en el interior y exterior del vivero fueron registrados mediante el equipo Elitech RC-51H (Tabla 5 y Figura 6). Tabla 5. Características climáticas de temperatura, humedad y precipitación de octubre 2024 - abril 2025, al interior del vivero. Interior del vivero Exterior del vivero Meses T. media (°C) Humedad relativa (%) Precipitación (mm/mes) T. media (°C) Humedad relativa (%) Precipitación (mm/día) Oct. 25,99 84,35 125,00 26,41 84,76 125,00 Nov. 24,51 90,98 275,70 24,79 89,98 275,70 Dic. 24,52 89,89 543,90 24,35 90,97 543,90 Ene. 24,49 88,87 380,40 24,55 88,05 380,40 Feb. 25,24 87,45 489,40 25,38 86,52 489,40 Mar. 24,61 89,84 483,70 24,61 89,84 483,70 Abr. 25,21 87,81 202,70 25,41 87,20 202,70 Prom. 24,94 88,46 2500,80 25,07 88,19 2 500,80 24 Figura 6. Parámetros hidrometeorológicos de temperatura, humedad y precipitación del interior y exterior del vivero. 3.2. Materiales y métodos 3.2.1. Materiales y equipos Para la investigación como material biológico se dispuso de plantas de Jergón Sacha. Como materiales para el montaje de las muestras para su determinación de las especies se utilizaron prensas botánicas, cartón, papel periódico y disecador de muestra botánicas. Para la preparación del sustrato se empleó tierra agrícola, aserrín descompuesto y tierra aluvial con predominancia de arena, bolsas negras de polietileno para el embolsado del sustrato. Para la estructura del vivero y las camas se utilizó cañas de bambú y para el techo y protección del vivero se empleó malla raschel y malla metálica. Para las mediciones morfométricas de los plantones se utilizó vernier y wincha. Como equipos para medir los parámetros meteorológicos de temperatura y humedad relativa se utilizó dos termohidrómetros Elitech RC-51H y GPS para el georreferenciamiento en campo de la ubicación de las plantas de Jergón Sacha. 3.2.2. Instalación del vivero, siembra de cormelos y actividades pos-siembra 3.2.2.1. Instalación del vivero Se instaló un vivero de 5,2 m ancho por 7,40 m de largo con un de 38,48 m2 y con una altura comprendida entre 2 a 2,5 m. Luego se colocó malla Raschel con 75 % de sombra en el techo y en la parte lateral con el fin de darle ciertas condiciones y evitar daños por el ingreso de personas y animales. En el interior se instaló 3 camas de cría de 6 m largo x 1 m de ancho, con calles de 0,50 m entre camas. 25 Figura 7. Croquis del vivero. 3.2.2.2. Preparación y llenado del sustrato Para la preparación del sustrato se empleó tierra agrícola, aserrín descompuesto y tierra aluvial con predominancia de arena en una proporción de 2:1:4 seguidamente se procedió al embolsado del sustrato en bolsas negras de 10 x 12 pulgadas y luego se distribuyeron en las camas de cría de acuerdo con los tratamientos previstos para la presente investigación. 26 Figura 8. Llenado de bolsas y ordenado. 3.2.2.3. Obtención de las plantas Las plantas se obtuvieron de 3 gradientes altitudinales para ello se tuvo en cuenta el diámetro del cormo entre los 18 a 22 cm para luego ordenarlos previa determinación de la especie con el cual se trabajó de esta manera usando D. plowmanii. Figura 9. Diámetro del cormo de D. plowamanii. 12 pulgadas 10 pulgadas Diámetro Entre 18 a 22 cm 27 Tabla 6. Hábitats de la recolección de cormelos. M. Localidades de procedencia T.M. (°C) H.R. (%) P. (mm/año) Tipos de hábitat Estado de planta M1 Jorge Chávez ** 32,3 78,6 2 412,7 Sistema agroforestal (Cacao, plátano y entre otros) Maduro M2 Nueva Libertad * Sistema agroforestal (Palma, bijao, guaba y plátano) Maduro M3 Nuevo Jaén ** Sistema agroforestal (cacao recién establecido, bolaina, capirona, cedro, shapaja, cetico, frejol de palo y otros) Maduro M4 La Merced de Locro * 31,17 81,27 3 441,10 Sistema agroforestal (Cacao, plátano, guaba zapote, laurel cafetero, tornillo y shimbillo) Maduro M5 Julio Cesar Tello * Sistema agroforestal (bambúes, aguaje, caimito, cacao, palma aceitera, cetico, poma rosa y anona) Maduro M6 Chontayacu * Bosque secundario Purma (cetico, plátanos, pijuayo, cedro, yupil y entre otros) Estado de secamiento M7 San Pedro de Pacchaj ** 31,48 80,47 3 220,50 Bosque secundario Purma (guaba, miconia barbeyana, mango, pino chuncho y cetico) Maduro M8 Puente Moena *** Sistema agroforestal (café, guaba, palta, cetico, coca, topa y plátanos) Maduro M9 Puente Moena *** Sistema agroforestal (café, guaba, palta, cetico, coca, topa y plátanos) Maduro M: muestra, T: temperatura, *: Caserío, **: Centro poblado, ***: Sector 3.2.2.4. Siembra de cormelos Previamente a la siembra directa de cormelos en las bolsas con sustrato se procedió a humedecerlos un día antes, luego se fijó a una profundidad aproximada entre 8 a 10 mm, de acuerdo con los tratamientos preestablecidos. 28 Figura 10. Siembra de cormelos. 3.2.2.5. Actividades pos-siembra Posteriormente a la siembra de los cormelos se realizó labores de deshierbo y riego periódicamente de acuerdo con las condiciones del clima. También se realizó controles de forma manual de Chorthippus brunneus (saltamonte común) y Achatina fulica (caracol africano). Figura 11. Grillo en las plántulas de D. plowmanii. 8 a 10 mm Chorthippus brunneus (saltamonte común) Achatina fulica (caracol africano) 29 3.2.3. Metodología Para el proceso de instalación del proyecto de investigación se siguió en orden lógico las diferentes actividades como se muestra en el organigrama siguiente: Figura 12. Organigrama de las diferentes actividades 30 3.2.3.1. Determinación de la especie del género Dracontium encontrados en las gradientes altitudinales Las plantas colectadas para su determinación de las especies del género Dracontium fueron codificadas de acuerdo con sus procedencias y luego fueron llevadas al Herbario Selva Central Oxapampa (HOXA) - Jardín Botánico de MISSOURI. 3.2.3.2. Determinación del poder y energía germinativa de los cormelos del D. plowmanii con relación al tamaño de los cormelos y las gradientes altitudinales en fase de vivero – Poder germinativo (%) Se determinó mediante el conteo diario de las plántulas que germinaron gradualmente, los mismos que se realizaron diariamente a una hora preestablecida entre las 7:00 a 7:30 am desde octubre hasta abril. Luego los resultados fueron expresados en porcentaje de acuerdo con la cantidad de cormelos que germinaron por tratamientos según la fórmula siguiente: PG = N° de semillas germinadas N° de semillas sembradas x100 – Energía germinativa (%) En base a los resultados de la germinación de los cormelos se determinó la energía germinativa por tratamiento previstos para el estudio en base a las fórmulas siguientes. Para cormelos viables: EG = Total acumulado máximo porcentaje de germinación diaria media N°total de semillas germinadas x100 Para el total de cormelos sembradas: EG = Total acumulado máximo porcentaje de germinación diaria media N°total de semillas sembradas x100 3.2.3.3. Descripción del comportamiento vegetativo de los plantones del D. plowmanii con relación al tamaño de cormelos y la gradiente altitudinal La evaluación del comportamiento vegetativo de los plantones de Jergón Sacha se evaluó cada 7 días después de la germinación en el horario de 6:00 am por un periodo de tiempo de ocho meses en base a los indicadores que se detalla seguidamente: 31 - Altura del peciolo (cm) Consistió en la medición de la longitud vertical considerando desde la superficie del suelo hasta la parte superior donde se origina los segmentos lobulados. Las mediciones se realizaron con el apoyo de una wincha. Figura 13. Evaluación de altura del peciolo. - Altura de la copa (cm) Con respecto al indicador de la altura de la copa se midió tomando en consideración desde la parte superior del peciolo hasta el segmento lobulado de mayor altura, para ello se utilizó una wincha. Figura 14. Evaluación de la altura de la copa. 32 - Altura total de plantones (cm) Para este indicador, la medición se realizó desde el cuello basal al nivel de la superficie del pan de tierra hasta el segmento lobulado de la lámina foliar con mayor altura del plantón con el apoyo de una wincha. Figura 15. Evaluación de la altura total. - Diámetro basal de peciolo (mm) Consistió en medir el diámetro o grosor basal del peciolo a nivel de la superficie del pan de tierra para tal fin se utilizó un vernier mecánico. Figura 16. Evaluación del diámetro basal del peciolo. 33 - Diámetro superior del peciolo (mm) El diámetro o grosor superior del peciolo, se midió en el punto donde se inició la inserción de los foliolos con el apoyo de un vernier mecánico. Figura 17. Evaluación del diámetro superior de peciolo. - Diámetro de la copa (cm) El diámetro de la copa de los plantones se midió en un plano horizontal tomando como referencia los 4 puntos cardinales en dirección de Este (E) a Oeste (O) y en dirección de Norte (N) a Sur (S) con una wincha y luego se calculó el promedio. Figura 18. Evaluación de diámetro de la copa. 34 - Longitud de la lámina foliar (cm) La medición de la lámina foliar se midió tomando en consideración la parte vegetativa de mayor tamaño con el apoyo de una wincha. Figura 19. Evaluación de la lámina foliar. - Área foliar (cm2) El área foliar, se evaluó mediante imágenes fotográficas que se tomaron para cada plantón tomando como referencia una fracción de papel milimetrado luego se procedió a estimar con el aplicativo ImageJ. Figura 20. Estimación del área foliar. 35 - Número de segmentos lobulados La determinación del número de foliolos se realizó mediante el conteo a través de la observación directa a los plantones según los tratamientos preestablecidos para el presente estudio. Figura 21. Conteo de número de foliolos. - Número de hojas brotadas Consistió en el conteo directo de brotes que fueron emitiendo gradualmente durante el periodo de cría de los plantones en vivero. Figura 22. Número de hojas brotadas. 36 3.3. Aspectos metodológicos 3.3.1. Enfoque de investigación: Tomando en consideración los indicadores para el presente estudio, el enfoque de investigación fue cuantitativo debido a que se midieron en unidades con valores numéricos (Hernández et al., 2014). 3.3.2. Tipo de investigación: Atendiendo a la planificación del estudio fue prospectivo, en razón que se recolectaron los datos a propósito de la investigación por la tesista (Supo y Zacarías, 2020). 3.3.3. Nivel de investigación: Explicativo, debido a que se plantea relaciones de causa y efecto entre las variables tamaño de cormelos y la gradiente altitudinal sobre el comportamiento germinativo y vegetativo del D. plowmanii (Supo, 2014). 3.3.4. Diseño de investigación: Correspondió a un diseño experimental, tipo cuasi-experimental porque se manipuló las variables independientes para observar su influencia sobre las variables dependientes. Sólo que difieren de los experimentos “puros” en el grado de seguridad porque este tipo de investigación se enfoca en identificar la forma en la que influye o relaciona una variable independiente sobre la variable dependiente y qué es lo que esto produce (Hernández et al., 2014). 3.3.5. Variables de estudio Variables independientes: - Gradiente altitudinal - Tamaño de cormelos Variable dependiente: - Comportamiento germinativo - Comportamiento vegetativo 3.3.6. Componentes en estudio 3.3.6.1. Gradiente altitudinal (A) a1 = 250 a 500 m s. n. m. a2 = 750 a 1 000 m s. n. m. a3 = 1 250 a 1 500 m s. n. m. 3.3.6.2. Tamaño de cormelos (B) Para definir el tamaño de los cormelos se recolectó de las plantas de Jergón Sacha provenientes de los tres rangos altitudinales los mismos que se realizaron en 37 el proceso de la formulación del proyecto, tomado como criterio el tamaño de los cormos que estuvieron comprendidos entre 18 a 22 cm de diámetro con el fin de garantizar la homogeneidad de los cormos. Luego se agruparon en tres tamaños considerando sus alturas como se muestra seguidamente: b1 = Grande > 18 mm b2 = Mediano >14 mm - < 17,9 mm b3 = Pequeño < 13,9 mm Figura 23. Tamaño de cormelos. 3.3.7. Tratamientos en estudio Se consideró 9 tratamientos (Tabla 6). Tabla 6. Tratamientos de estudio. T. Clave Descripción T1 a1b1 250 a 500 m s. n. m. y tamaño de cormelo grande > 18 mm T2 a1b2 250 a 500 m s. n. m. y tamaño de cormelo mediano >14 mm - < 17,9 mm T3 a1b3 250 a 500 m s. n. m. y tamaño de cormelo pequeño < 13,9 mm T4 a2b1 750 a 1 000 m s. n. m. y tamaño de cormelo grande > 18 mm T5 a2b2 750 a 1 000 m s. n. m. y tamaño de cormelo mediano >14 mm - < 17,9 mm T6 a2b3 750 a 1 000 m s. n. m. y tamaño de cormelo pequeño < 13,9 mm T7 a3b1 1 250 a 1 500 m s. n. m. y tamaño de cormelo grande > 18 mm T8 a3b2 1 250 a 1 500 m s. n. m. y tamaño de cormelo mediano >14 mm - < 17,9 mm T9 a3b3 1 250 a 1 500 m s. n. m. y tamaño de cormelo pequeño < 13,9 mm 38 3.3.8. Diseño experimental El diseño experimental correspondió a Completamente Randomizado con Arreglo Factorial 3A x 3B. 3.3.8.1. Características del experimento Parcela experimental: - Número de tratamientos : 9 - Número de repeticiones : 4 - Largo de la parcela experimental : 7,4 m - Ancho de la parcela experimental : 5,3 m - Área total del experimento : 38,5 m2 Unidad experimental (UE): - Largo de la UE : 1 m - Ancho de la UE : 0,5 m - Total de UE : 36 - Área total de una UE : 0,5 m2 Cantidad de cormelos: - Número de cormelos por repetición : 10 - Número de cormelos por tratamiento : 40 - Total de cormelos por experimento : 360 3.3.9. Croquis experimental Figura 24. Croquis de la distribución de los tratamientos en la parcela experimental. 39 3.3.10. Esquema del Análisis Estadístico (ANVA) Fuente de variación G.L. Gradiente altitudinal (A) (a – 1) = 2 Tamaño de cormelos (B) (b – 1) = 2 Interacción de factores A x B (a – 1)*(b – 1) = 4 Error experimental (a*b)*(r-1) =27 Total ((a*b)*r)-1 = 35 3.3.11. Técnicas e instrumentos de recolección de datos La técnica de recolección de datos fue la de observación participante en razón que la tesista tomó los datos de acuerdo con los indicadores considerados para el estudio, para tal fin empleó instrumentos mecánicos de medición como vernier y wincha. 3.3.12. Análisis estadísticos Para la tabulación de datos se utilizó la hoja de cálculo del programa Microsoft Excel, y para el análisis de datos se empleó el programa SPSS v27 obteniendo los estadísticos descriptivos e inferencial. El contraste de hipótesis se realizó mediante el análisis de la varianza para el diseño experimental completo al azar con arreglo factorial 3A x 3B. Este proceso se asemeja al procedimiento estadístico seguido por Cacha (2021) y Pérez (2022), quienes emplearon un diseño factorial completamente al azar para evaluar el efecto de distintos factores combinados sobre variables agronómicas en especies de interés biotecnológico. El análisis estadístico permitió identificar diferencias significativas (p<0,05) entre tratamientos, tanto para las variables germinativas (energía germinativa y poder germinativo) como para las variables vegetativas (altura del peciolo, altura de la copa, altura total, diámetro basal del peciolo, diámetro superior del peciolo, diámetro de la copa, longitud de la lámina foliar, área foliar, número de segmentos lobulados, número hojas brotadas). 40 IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 4.1. Determinación de las especies del género Dracontium encontradas en las gradientes altitudinales Características de los órganos vegetativos según (Zhu y Croat, 2004). Tabla 7. Características de los órganos vegetativos de la D. croatii y D. plowmanii según (Zhu y Croat, 2004). Dracontium croatii Dracontium plowmanii Cormo Es hemisférico, de 8 a 11 cm de diámetro, 6,5 cm de espesor, plano en la parte superior, redondeado y de color blanquecino a marrón en la parte inferior. Es hemisférico, de 10 a 20 cm de diámetro, de 6 a 9 cm de espesor, plano en la parte superior, redondeado y blanco a marrón en la parte inferior. Cormelo Cormelos pocos, redondeados o cilíndricos alargados, de 0,5 a 1 cm de diámetro, de 1 a 2,3 cm de largo, que nacen alrededor de la periferia del cormo. Cormelos pocos, redondeados o cilíndricamente alargados de 0,5 a 0,8 cm de diámetro, de 0,8 a 1 cm de largo, alrededor del cormo. Raíces Raíces blanquecinas, de 2 a 4 mm de diámetro, catafilos 3 a 5, 5 cm, marrón oscuro o rosado, 5 a 15 cm de largo sobre el suelo. Raíces blancas, fuertes, catafilos de 2 a 3, o de 5,5 a 14 cm de marrón claro, alcanzando o sobrepasando el nivel del suelo. Hojas Pecíolos de 1,4 a 3 m de largo sobre el suelo, 2 a 4,5 cm de diámetro en el punto medio verde oscuro o verde parduzco, moteado con manchas de color blanco sucio o verde pálido y formando un patrón reptiliano, liso en la mitad superior y con protuberancias irregulares. Lámina juvenil sagitada o sagitadamente lobulada; extendiéndose horizontalmente, 1 a 1,5 m de diámetro. Peciolo de 1 a 2 m de largo, de 3 a 4 cm de diámetro, verde pardusco, contrastantemente moteado con manchas de color blanco sucio o verde pálido y formando un patrón reptil, liso o generalmente con proyecciones espinosas; lámina juvenil sagitada o sagitadamente lobulada maduro cuchillas extendiéndose horizontalmente, de 1 a 1,2 m de diámetro. Pedúnculo De 80 a 120 cm de largo sobre el suelo, de 1,3 a 3,5 cm de diámetro desde el punto medio, más de la mitad de largo que el pecíolo, moteado similar al pecíolo, pero de color más intenso. De 30 a 70 cm de largo sobre el suelo, de 1 a 2 cm de diámetro, desde menos de la mitad de largo que el pecíolo, moteado similar al pecíolo, pero de color más intenso, verde. 41 Figura 25. Características del D. plowmanii. En el ámbito de estudio se determinó la existencia de dos especies, el D. plowmanii y D. croatii en contraste a otros autores como Barreto y Vilchez (2021), que reportaron la especie de D. spruceanum muestra que procedió de la cuidad de Juanjuí, departamento de San Martín. De igual manera Cacha (2021), reportó la especie de D. loretense en plantas provenientes de la cuidad de Tocache. También Moreno (2023), determinó como D. loretense de muestras extraídas del caserío Nuevo Portugal, distrito de Uchiza, provincia de Tocache y Bocanegra (2007), registró la especie D. loretense en 3 zonas ecológicas, dos en la provincia de Lamas del Valle del Mishquiyacu; distrito Pamashto y distrito Barranquita y la tercera en la provincia de San Martín; sector Cerro Escalera. Por otro lado, Mixan (2022), reportó como D. spruceanum en el Bosque Reservado de la Universidad Nacional Agraria de la Selva (BRUNAS) en el departamento de Huánuco. Es importante precisar que según Zhu y Croat (2004), el D. spruceanum (Schott) G.Zhu antes era más conocido como D. loretense Krause. Dracontium croatii Dracontium plowmanii 42 4.2. Determinación del poder y energía germinativa de los cormelos del D. plowmanii con relación al tamaño de cormelos y la gradiente altitudinal 4.2.1. Poder germinativo de cormelos del D. plowmanii En términos generales, los cormelos pequeños de D. plowmanii lograron un 100 % de poder germinativo en las tres gradientes altitudinales evaluadas. Les siguieron los cormelos medianos, que alcanzaron porcentajes superiores al 90 %, evidenciando un alto potencial germinativo en ambos tamaños, aunque con una ligera ventaja para los cormelos pequeños en todas las condicione (Figura 26). Figura 26. Poder germinativo de cormelos del D. plowmanii. Tabla 8. Análisis de la varianza para el poder germinativo por la influencia en el tamaño de cormelo y la gradiente altitudinal. Fuentes de variación SC GL CM Fc Sig. Tamaño de cormelo 1 355,556 2 677,778 12,200 <0,001** Gradiente altitudinal 288,889 2 144,444 2,600 0,093 ns Tamaño de cormelo x Gradiente altitudinal 377,778 4 94,444 1,700 0,179 ns Error experimental 1 500,000 27 55,556 Total 3 522,222 35 ns: No demuestra la existencia de diferencias estadísticas significativas; **: existen diferencias estadísticas altamente significativas (p<0,01). 43 En el análisis de la varianza para el poder germinativo, se registró que el tamaño de cormelo influyó de manera significativa sobre el poder germinativo. Para el caso de la gradiente altitudinal no demuestra la existencia de diferencias estadísticas significativas sobre el poder germinativo, además de la ausencia de interacción estadística entre el tamaño de cormelo y la gradiente altitudinal (Tabla 8). En la comparación de medias mediante Tukey para los efectos principales, sobresalen en un mayor poder germinativo los cormelos pequeños y medianos, siendo superior al obtenido en los cormelos grandes, asimismo la gradiente no interfiere para el poder germinativo (Tabla 9). Tabla 9. Comparación de medias para el poder germinativo por la influencia del tamaño de cormelo y la gradiente altitudinal. Tamaño del cormelo Gradiente altitudinal (m s. n. m.) Promedio total 250 a 500 750 a 1 000 1 250 a 1 500 Pequeño 100,00 100,00 100,00 100,00 a Mediano 90,00 95,00 95,00 93,33 a Grande 80,00 80,00 95,00 85,00 b Promedio total 90,00 a 91,67 a 96,67 a 92,78 Letras diferentes en las mismas filas o columnas determinan significancia estadística. El poder germinativo de los cormelos en sus diferentes tamaños para el estudio osciló entre 80 y 100 % del D. plowmanii, que fue similar a lo señalado por Brenes (2015), que alcanzó el 100% de germinación en cormelos del mismo género del Dracontium para la especie de Dracontium gigas. Asimismo, según Patiño et al. (2011), reportaron niveles de germinación de cormelos de Dracontium grayumianum sometidos a tratamientos pregerminativos, con agua de coco 100 %, con ácido giberélico 83,25 % y testigo 41,75 %. También Nurjannah et al. (2021), obtuvieron para la especie Amorphophallus muelleri 86,67 % de poder germinativo. Las diferencias en los porcentajes de germinación reportados por los autores antes referidos, con respecto a los valores obtenidos en el presente estudio se pueden atribuir a factores como la procedencia de los cormelos de diferentes hábitats que estarían relacionados con la altitud y la calidad de sitio como factores: climáticos, edáficos, topográficos y de competencia, lo que se corrobora con lo indicado por Bravo-Navasy y Sánchez-Romero (2022), que concluyeron que las diferencias de poder germinativo responden a factores ambientales y el origen de las semillas. Por otra parte, el porcentaje de germinación que resultó 44 ser mayor en cormelos de tamaño pequeño y mediano con respecto a los cormelos grandes como se observa en la (Tabla 9) probablemente se debe al patrón general que se presenta en las semillas de las plantas dentro de una misma especie donde el porcentaje de germinación es mayor en semillas pequeñas lo que se corrobora por los