1 
 
 
UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA DE LA SELVA 
 
FACULTAD DE RECURSOS NATURALES RENOVABLES 
 
ESCUELA PROFESIONAL DE INGENIERÍA EN RECURSOS 
NATURALES RENOVABLES 
 
 
 
 
 
INFLUENCIA DE DIETAS Y TEMPERATURAS EN EL DESARROLLO LARVARIO 
DE Ranitomeya sirensis (ANURA: DENDROBATIDAE), TINGO MARIA- PERÚ 
 
Tesis 
 
Para optar el título de 
 
INGENIERO EN RECURSOS NATURALES RENOVABLES 
 
 
PRESENTADO POR: 
 
FIORELLA VIOLETA MEDINA MALQUI 
 
 
Tingo María - Perú 
2023  
 
UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA DE LA SELVA 
FACULTAD DE RECURSOS NATURALES RENOVABLES 
Tingo María- Perú 
ACTA DE SUSTENTACION DE TESIS N°097-2023-FRNR-UNAS 
Los que suscriben, Miembros del Jurado de Tesis, reunidos con fecha 20 de abril de 2023, a horas 7:00 
p.m. de la Escuela Profesional de Ingeniería en Recursos Naturales Renovables de la Facultad de 
Recursos Naturales Renovables para calificar la tesis titulada: 
"INFLUENCIA DE DIETAS Y TEMPERATURAS EN EL DESARROLLO 
LARVARIO DE Ranitomeya sirensis (ANURA: DENDROBATIDAE), TINGO 
MARÍA-PERÚ" 
Presentado por la Bachiller: MEDINA MALQUI, FIORELLA VIOLETA, después de haber 
escuchado la sustentación y las respuestas a las interrogantes formuladas por el Jurado, se declara 
APROBADO con el calificativo de "EXCELENTE". 
En consecuencia, el sustentante queda apto para optar el Titulo Profesional de INGENIERO EN 
RECURSOS NATURALES RENOVABLES, que será aprobado por el Consejo de Facultad, 
Tramitándolo al Consejo Universitario para el otorgamiento del Título Correspondiente. 
Dr. LASLAO RUIY, RENGIFO 
PRESIDkNTE 
Ing. M. Sc. WARREN RIOS GARCÍA 
MIEMBRQ 
NACIONA AGRARA O 
Tingo María, 07 de noviembre de 2023 
Dr. CASIANO AGUIRREESCALANTE 
MIEMBRO 
Dr. EDILBERTO CHUQUÍLIN BUSTAMANTE 
ASESOR 

2 
 
 
UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA DE LA SELVA 
FACULTAD DE RECURSOS NATURALES RENOVABLES 
ESCUELA PROFESIONAL DE INGENIERÍA EN RECURSOS 
NATURALES RENOVABLES 
 
 
 
 
 
INFLUENCIA DE DIETAS Y TEMPERATURAS EN EL DESARROLLO LARVARIO 
DE Ranitomeya sirensis (ANURA: DENDROBATIDAE), TINGO MARIA- PERÚ 
Autor : Fiorella Violeta MEDINA MALQUI 
Asesor : Dr. Edilberto CHUQUILIN BUSTAMANTE 
Programa de investigación : Valoración de la biodiversidad y recursos naturales.  
Línea de investigación      : Manejo, conservación de la biodiversidad y recursos 
naturales. 
Eje temático : Manejo de Fauna Silvestre en Cautiverio 
Lugar de ejecución : Tingo María 
Duración :  7 meses 
Financiamiento : 5 210,70 soles 
FEDU : No 
Propio : Sí 
Tingo María, Perú 
2023  
3 
 
DEDICATORIA 
 
 
A Dios, por darme la vida, por darme la 
familia y los amigos que tengo. 
 
  
A mis padres Liliana Malqui Garcia y Bruno 
Medina Galvez por fomentar en mí el deseo 
de superación y el anhelo de triunfo en la 
vida, que con su demostración de amor 
ejemplar me ha enseñado a no desfallecer, ni 
rendirme ante nada y siempre perseverar. 
 
A mis hermanos Mirella Yanire Casimiro 
Malqui, Edson Erick Casimiro Malqui y 
Omar Antazu Malqui por su aliento y apoyo 
incondicional en momentos difíciles que 
pude atravesar durante la ejecución de la 
presente investigación. 
 
 
 
 A mis amigos de la infancia por su amistad 
invaluable que hasta el día de hoy me 
acompañan y me llenan de fortaleza ante cada 
adversidad. 
  
  
4 
 
AGRADECIMIENTOS 
A  nuestro Dios, padre por brindarme la fortaleza física y mental en la vida cotidiana y 
guiarme por el buen camino durante mi formación profesional. 
A  la Universidad Nacional Agraria de la Selva, “alma mater” Institución de prestigio a nivel 
Nacional e Internacional, en cuyas aulas realicé mi formación profesional. 
A  los docentes de la Facultad de Recursos Naturales renovables, quienes contribuyeron en 
mi formación académica. 
Al  Dr. Edilberto Chuquilin Bustamante, por su aceptación, paciencia y confianza, así como 
por su asesoramiento incondicional. 
A los miembros integrantes del jurado: Ing. M.Sc Warren Ríos García, Dr. Ladislao Ruiz 
Rengifo y el Dr. Casiano Aguirre Escalante, por sus orientaciones y valiosos consejos. 
A Dipl. Biol. Rainer Schulte que hoy en paz descanse, por brindarme la guía y que me 
inspiro a formular este presente trabajo de investigación. 
A  Psic. Quispe Orihuela, Mayra Geraldine, tu ayuda ha sido fundamental, has estado 
conmigo en los momentos más turbulentos y gracias a tu aporte profesional, ayudaste a 
mantenerme estable psicológica y emocionalmente para no desistir. 
Al  Ing. Carlos Enrique Medina Villanueva por su compañerismo, amistad y por su apoyo. 
Este proyecto no fue fácil, pero estuviste motivándome y ayudándome hasta mas no 
poder, para concluir satisfactoriamente esta Tesis. 
A  Gabriel Cambero Scherader, quien fue mi apoyo emocional por acompañarme en mis 
crisis de Ansiedad durante la ejecución de la presente investigación. 
A  todas las personas que directa e indirectamente colaboraron para la culminación del 
presente trabajo.  
5 
 
ÍNDICE 
    
Página 
I. INTRODUCCIÓN………………………………………………………………….. 1 
II. REVISION DE LITERATURA……………………………………………………. 3 
 
2.1. Marco teórico…………………………………………………………………. 3 
  
2.1.1. Generalidades de Ranitomeya sirensis………………………………. 3 
   
2.1.1.1. Descripción general de la familia Dendrobatidae…………… 3 
   
2.1.1.2. Clasificación taxonómica……………………………………. 3 
   
2.1.1.3. Distribución y habitad……………………………………….. 4 
   
2.1.1.4. Ciclo biológico………………………………………………. 4 
   
2.1.1.5. Alimentación………………………………………………… 5 
   
2.1.1.6. Estado de conservación……………………………………… 6 
   
2.1.1.7. Usos de la especie…………………………………………… 6 
  
2.1.2. Situación de los anfibios en el Perú…………………………………… 6 
  
2.1.3. Manejo de dendrobátidos para la conservación……………………….. 7 
   
2.1.3.1. Manejo de dendrobátidos in situ o raching artificial…………. 8 
   
2.1.3.2. Manejo de dendrobátidos ex situ……………………………... 8 
  
2.1.4. Temperatura……………………………………………………………. 9 
  
2.1.5. Dietas…………………………………………………………………… 10 
 
2.2. Estado del arte…………………………………………………………………. 11 
III. MATERIALES Y MÉTODOS……………………………………………………… 14 
 
3.1. Lugar de ejecución…………………………………………………………….. 14 
  
3.1.1. Ubicación política……………………………………………………… 14 
  
3.1.2. Ubicación geográfica…………………………………………..….…… 14 
  
3.1.3. Zona de vida y clima…………………………………………………… 14 
  
3.1.4. Fisiografía……………………………………………………………… 14 
  
3.1.5. Composición arbórea.………………………………………………….. 15 
 
3.2. Materiales y métodos…………………………………………………...……… 15 
  
3.2.1. Materiales y equipos…………………………………………………… 15 
   
3.2.1.1. Material biológico……………………………………………. 15 
   
3.2.1.2. Herramientas, equipos e insumos……….……………………. 16 
  
3.2.2. Metodología……………………………………………………………. 16 
   
3.2.2.1. Tipo y nivel de investigación………………………………… 16 
6 
 
   
3.2.2.2. Población y muestra..…………………………………………  17 
   
3.2.2.3. Diseño experimental………………………………………….. 17 
   
3.2.2.4. Desarrollo de la investigación………………………………… 19 
   
3.2.2.5. Variables evaluadas……………….………………………….. 23 
   
3.2.2.6. Actividades posteriores a la investigación………….………… 23 
IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN……………………………………………………. 25 
 
4.1. Peso de Ranitomeya sirensis por influencia de dietas y temperaturas………… 25 
 
4.2. Longitud de Ranitomeya sirensis por influencia de dietas y temperaturas……. 30 
V. CONCLUSIONES………………………………….……………………………….. 36 
VI. PROPUESTAS A FUTURO………….………………….………….……………… 37 
VII. REFERENCIA……………….…………….………….………….………………… 38 
VIII. ANEXO……………….…………….………….………….………………………... 44 
 
 
 
  
7 
 
ÍNDICE DE TABLAS 
Tabla  Página 
1 Medida de longitud de Ranitomeya lamasi para la semana respectiva…………... 11 
2 Medida de longitud de los renacuajos para la semana respectiva…………........... 12 
3 Factores en estudio…………...........…………...........…………...........…………. 17 
4 Tratamientos en estudio…………...........…………...........………….................... 18 
5 Prueba Shapiro-Wilks de la variable peso…………...........…………................... 25 
6 Resumen de prueba Kruskal-Wallis y ANVA de la variable peso.………........... 26 
7 Comparación múltiple de medias (α = 0,05) del factor temperatura en la semana 
3.. …………...........…………...........…………..........................…………........... 27 
8 Test de Tukey (α = 0,05) del factor dietas en la semana 8.….………................... 27 
9 Test de Tukey (α = 0,05) de la interacción de los factores temperatura y dietas en 
la semana 8………………………………………………………………………. 28 
10 Test de Tukey (α = 0,05) del factor temperatura en la semana 10………………. 28 
11 Test de Tukey (α = 0,05) del factor dietas en la semana 10………………………. 29 
12 Prueba Shapiro-Wilks de la variable peso………………………………………... 30 
13 Resumen de prueba Kruskal-Wallis y ANVA de la variable longitud……………. 31 
14 Test de Tukey (α = 0,05) del factor dietas en la semana 2……………………….. 32 
15 Test de Tukey (α = 0,05) del factor temperatura en la semana 3…………………. 32 
16 Test de Tukey (α = 0,05) de la interacción de los factores temperatura y dietas en 
la semana 8……………………………………………………………………….. 33 
17 Test de Tukey (α = 0,05) del factor temperatura en la semana 10……………….. 34 
18 Datos registrados de pesos en Ranitomeya sirensis durante las 10 semanas de 
evaluación………………………………………………………………………… 45 
19 Prueba de Kruskal Wallis para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la 
semana 0………………………………………………………………………….. 45 
20 Comparación múltiple de medias de la variable pesos en los factores y sus 
interacciones en la semana 0……………………………………………………… 46 
21 Prueba de Kruskal Wallis para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la 
semana 1………………………………………………………………………….. 46 
22 Comparación múltiple de medias de la variable pesos en los factores y sus 
interacciones en la semana 1……………………………………………………… 46 
8 
 
23 Análisis de varianza para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la semana 2. 47 
24 Prueba Tukey de la variable pesos en los factores y sus interacciones en la semana 
2………………………………………………………………………………….. 47 
25 Prueba de Kruskal Wallis para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la 
semana 3………………………………………………………………………….. 47 
26 Comparación múltiple de medias de la variable pesos en los factores y sus 
interacciones en la semana 3……………………………………………………. 48 
27 Análisis de varianza para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la semana 4. 48 
28 Prueba Tukey de la variable pesos en los factores y sus interacciones en la semana 
4………………………………………………………………………………….. 48 
29 Prueba de Kruskal Wallis para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la 
semana 5………………………………………………………………………….. 49 
30 Comparación múltiple de medias de la variable pesos en los factores y sus 
interacciones en la semana 5……………………………………………………… 49 
31 Prueba de Kruskal Wallis para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la 
semana 6. ………………………………………………………………………… 49 
32 Comparación múltiple de medias de la variable pesos en los factores y sus 
interacciones en la semana 6. …………………………………………………….. 50 
33 Prueba de Kruskal Wallis Para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la 
semana 7………………………………………………………………………….. 50 
34 Comparación múltiple de medias de la variable pesos en los factores y sus 
interacciones en la semana 7……………………………………………………… 50 
35 Análisis de varianza para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la semana 8. 51 
36 Prueba Tukey de la variable pesos en los factores y sus interacciones en la semana 
8…………………………………………………………………………………... 51 
37 Prueba de Kruskal Wallis para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la 
semana 9………………………………………………………………………….. 51 
38 Comparación múltiple de medias de la variable pesos en los factores y sus 
interacciones en la semana 9……………………………………………………… 52 
39 Análisis de varianza para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la semana 10. 52 
40 Prueba Tukey de la variable pesos en los factores y sus interacciones en la semana 
10…………………………………………………………………………………. 52 
9 
 
41 Datos registrados de longitud en Ranitomeya sirensis durante las 10 semanas de 
evaluación………………………………………………………………………… 53 
42 Prueba de Kruskal Wallis para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la 
semana 10………………………………………………………………………… 53 
43 Comparación múltiple de medias de la variable longitud en los factores y sus 
interacciones en la semana 10…………………………………………………….. 54 
44 Prueba de Kruskal Wallis para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la 
semana 1………………………………………………………………………….. 54 
45 Comparación múltiple de medias de la variable longitud en los factores y sus 
interacciones en la semana 1……………………………………………………... 54 
46 Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 
2…………………………………………………………………………………... 55 
47 Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 2………………………………………………………………………….. 55 
48 Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 
3…………………………………………………………………………………... 55 
49 Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 3…………………………………………………………………………. 56 
50 Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 
4…………………………………………………………………………………... 56 
51 Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 4………………………………………………………………………….. 56 
52 Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 
5…………………………………………………………………………………... 57 
53 Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 5………………………………………………………………………….. 57 
54 Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 
6…………………………………………………………………………………... 57 
55 Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 6………………………………………………………………………….. 58 
56 Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 
7…………………………………………………………………………………... 58 
10 
 
57 Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 7………………………………………………………………………….. 58 
58 Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 
8…………………………………………………………………………………... 59 
59 Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 8………………………………………………………………………….. 59 
60 Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 
9…………………………………………………………………………………... 59 
61 Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 9………………………………………………………………………….. 60 
62 Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 
10…………………………………………………………………………………. 60 
63 Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 10………………………………………………………………………… 60 
  
11 
 
ÍNDICE DE FIGURAS 
Tabla 
 
Página 
1 Equipos empleados el experimento……………………………………………… 61 
2 Equipos de protección personal – COVID 19…………………………………… 61 
3 Toma de datos in-situ para determinar variable temperatura……………………. 62 
4 Termo-Higrómetro digital para control de temperatura…………………………. 62 
5 Materiales para mantenimiento de metamorfos de Ranitomeya sirensis………... 63 
6 Manta térmica con termostato para control de temperatura……………………... 63 
7 Materiales de trabajo en el laboratorio, empleados en el experimento…………... 64 
8 Laboratorio condicionado para experimento…………………………………….. 64 
9 Búsqueda y colecta de huevos de Ranitomeya sirensis…………………………. 65 
10 Colecta de huevos para experimento……………………………………………. 65 
11 Transporte de material genético para inicio de experimento……………………. 66 
12 Huevos de Ranitomeya sirensis…………………………………………………. 66 
13 Huevos fértiles de Ranitomeya sirensis…………………………………………. 67 
14 Puesta de huevos infértiles de Ranitomeya sirensis……………………………… 67 
15 Desarrollo embrionario de huevos fértiles de Ranitomeya sirensis……………… 68 
16 Desarrollo embrionario con formación de región cefálica y brote cauda de 
Ranitomeya sirensis……………………………………………………………... 
68 
17 Renacuajo recién eclosionado…………………………………………………… 69 
18 Embrión de Rantomeya sirensis con membrana protectora……………………… 69 
19 Vista ventral renacuajo recién eclosionado……………………………………… 70 
20 Puesta de tres por eclosionar……………………………………………………... 70 
21 Puesta de dos por eclosionar…………………………………………………….. 71 
22 Disolución de hígado que sirve como carnada para cultivo de larvas de zancudo. 71 
23 Integración con Paramecium para alimento de larvas de zancudo……………… 72 
24 Medición de peso del renacuajo en estadios iniciales……………………………. 72 
25 Colecta de cultivo de alimento vivo- larvas de zancudo………………………… 73 
26 Medición de longitud de los renacuajos de cada tratamiento experimental……… 73 
27 Registro individual de datos de peso y medida de renacuajos en cada tratamiento 74 
28 Renacuajo con extremidades anteriores desarrolladas…………………………... 74 
29 Renacuajos apunto de exponer las extremidades anteriores…………………….. 75 
12 
 
30 Alimento comercial Nutrafin Max utilizado en el experimento………………… 75 
31 Renacuajo con provisión de alimento vivo……………………………………… 76 
32 Manipulación de renacuajo para toma de datos…………………………………. 76 
33 Renacuajos en cada tratamiento experimental…………………………………... 77 
34 Calibración de temperatura y humedad de laboratorio………………………….. 77 
35 Manipulación y toma de datos…………………………………………………... 78 
36 Manipulación y toma de datos…………………………………………………... 78 
37 Xanthosomas para terrario que será ubicados junto a las ranas juveniles hasta la 
liberación………………………………………………………………………… 
 
79 
38 Limpieza y desinfección de Xanthosomas………………………………………. 79 
39 Materiales e ingredientes para preparación de alimento de cultivo de Drosophila. 80 
40 Alimento vivo moscas de fruta para juveniles en cautiverio……………………. 80 
41 Individuos juveniles en terrarios acondicionados……………………………….. 81 
42 Liberación de especímenes juveniles a bambusal BRUNAS……………………. 81 
 
  
13 
 
RESUMEN 
Los factores ambientales, como la temperatura y la cantidad de nutrientes disponibles, 
son los principales responsables de las variaciones en cuanto al tamaño y edad en que ocurre la 
metamorfosis. Con el propósito de investigar más a fondo este asunto, se llevó a cabo un estudio 
para determinar cómo la dieta y la temperatura afectan el tiempo de desarrollo larvario y el 
proceso de metamorfosis en Ranitomeya sirensis ya que los resultados servirán de orientación 
y guía para aquellas investigadores e instituciones interesadas en estudiar este tipo de especies 
de rana. La investigación se realizó en un ambiente acondicionado para terrarios, en el distrito 
de Rupa Rupa, provincia de Leoncio Prado, región Huánuco. Para lo cual se utilizaron 16 
huevos de Ranitomeya sirensis, alimento comercial de alevinos de marca Nutrafin y larvas de 
zancudo. Se empleó un diseño completamente al azar (DCA) con arreglo factorial 2A x 2B, con 
4 tratamientos de constituido por la interacción de dieta y temperatura, con 4 repeticiones, 
haciendo un total de 16 unidades experimentales, teniendo como tratamientos los siguientes T1 
(23 °C – 25.9 °C + Alimento comercial Nutrafin), T2 (23 °C – 25.9 °C + Larvas de zancudo), 
T3 (26 °C – 29 °C + Alimento comercial Nutrafin) y T4 (26 °C – 29 °C + Larvas de zancudo). 
Teniéndose mayores valores de pesos en Ranitomeya sirensis con el rango de temperatura de 
26-29 °C, puesto que tiene diferencias estadísticas en las semanas 3, 8 y 10. Asimismo mayor 
valores de pesos se registró con la dieta de alimento comercial, dado que muestra diferencia 
estadística en la semana 8 y 10. Por otra parte, mayor longitud en Ranitomeya sirensis se 
registró con el rango de temperatura de 26-29 °C, puesto que tiene diferencias estadísticas en 
las semanas 3, 8 y 10. Asimismo mayor longitud se evidenció con la dieta de alimento 
comercial, dado que muestra diferencia estadística en la semana 8. 
Palabras clave: Ranitomeya sirensis, temperatura, dietas, metamorfosis.  
14 
 
ABTRACT 
INFLUENCE OF DIETS AND TEMPERATURE ON THE LARVAL DEVELOPMENT 
OF Ranitomeya sirensis (ANURA: DENDROBATIDAE), TINGO MARIA- PERU 
Environmental factors, such as temperature and the amount of available nutrients, are 
primarily responsible for variations in size and age at which metamorphosis occurs. In order to 
further investigate this matter, a study was carried out to determine how diet and temperature 
affect larval development time and the metamorphosis process in Ranitomeya sirensis, since 
the results will serve as orientation and guide for those researchers and institutions interested 
in studying this type of species. frog. The research was carried out in an environment 
conditioned for terrariums, in Rupa Rupa district, Leoncio Prado province, Huánuco region. 
For which 16 Ranitomeya sirensis eggs, Nutrafin brand commercial fingerling food, mosquito 
larvae, were used. A completely randomized design (DCA) was used with a 2A x 2B factorial 
arrangement, with 4 treatments consisting of the interaction of diet and temperature, with 4 
repetitions, making a total of 16 experimental units, having as treatments the following T1 (23 
°C – 25.9 °C + commercial food Nutrafin), T2 (23 °C – 25.9 °C + mosquito larvae), T3 (26 °C 
– 29 °C + commercial food Nutrafin) and T4 (26 °C – 29 °C + mosquito larvae). Having higher 
weight values in Ranitomeya sirensis with the temperature range of 26-29 °C, since it has 
statistical differences in weeks 3, 8 and 10. Likewise, higher weight values were recorded with 
the commercial food diet, since shows statistical difference in week 8 and 10. On the other 
hand, greater length in Ranitomeya sirensis was recorded with the temperature range of 26-29 
°C, since it has statistical differences in weeks 3, 8 and 10. Likewise, greater length was 
evidenced with the diet of commercial food, since it shows a statistical difference in week 8. 
Keywords: Ranitomeya sirensis, temperature, diets, metamorphosis. 
1 
 
I. INTRODUCCIÓN 
El Perú es reconocido siendo uno de los 5 países que tiene la fauna anfibia más diversa 
del mundo. 
Debido a la gran biodiversidad característica de la zona, en el Bosque Reservado de la 
Universidad Nacional Agraria de la Selva (BRUNAS), se tiene presencia de una especie de rana 
venenosa denominada Ranitomeya sirensis, (Rana dardo de bambú), que tienen como hábitat 
principal las cavidades de las cañas de bambú de Dendrocalamus asper (Blas, 2009), cavidades 
producidas por las caídas naturales por efecto del viento. Sin embargo, el gran interés de la 
prominente alternativa forestal que nos brinda esta especie de bambú, que son usados para 
viviendas y puentes, el consumo de brotes ya que no son amargos y su sabor es unos de los 
mejores entre los bambúes tropicales (Londoño, 2021), estas propiedades dan lugar a que sean 
extraídas de forma desmesurada. 
En los últimos años se presume que se encuentra con una población disminuida de estas 
ranas debido a la tala irresponsable de cañas de bambú por el corte por encima del nudo, 
dificultando la acumulación de agua necesarios para el desarrollo larvario. 
Varios estudios han señalado que, durante la fase de metamorfosis, hay diferencias en 
la cantidad y calidad de los alimentos disponibles para los individuos en su etapa larval. Estas 
diferencias pueden influir en el tamaño que alcanzan durante la metamorfosis, así como en su 
capacidad para evadir a los depredadores (Travis y Trexler, 1986). 
Se ha determinado que la temperatura y la cantidad de nutrientes disponibles son los 
factores más significativos que influyen en las diferencias en cuanto al tamaño y la edad en que 
ocurre la metamorfosis (Alvarez y Nicieza, 2002). 
 La destrucción de los hábitats, la caza y tráfico ilegal, han traído desaparición de las 
especies, muchas no solo son importantes para el equilibrio biológico de su ecosistema, sino 
con altas posibilidades de uso para beneficio directo del hombre. En lo que respecta a las ranas 
venenosas, es común que sean capturadas en su hábitat natural y sacadas al exterior debido a la 
creciente demanda de estas especies como mascotas y también por los componentes presentes 
en su piel que se han demostrado útiles en diferentes estudios como analgésicos y en el 
tratamiento de enfermedades como el Alzheimer (Lombeida, 1998). 
2 
 
Este fenómeno ha generado un aumento en la atención hacia la cría en cautiverio de 
estas especies, lo que a su vez ha incentivado la búsqueda de conocimientos sobre las 
condiciones ambientales y la calidad de la dieta necesarias para un adecuado desarrollo larvario. 
En este contexto, surge la siguiente pregunta: ¿Cómo influye las dietas y ltemperaturas en el 
desarrollo larvario de Ranitomeya sirensis (Anura: Dendrobatidae), Tingo María-Perú?. 
Con este propósito en mente, se realizó una investigación para determinar cómo la dieta 
y la temperatura influyen en el tiempo que tarda en desarrollarse la fase larval y en el proceso 
de metamorfosis de Ranitomeya sirensis. Los resultados obtenidos pueden ser de gran utilidad 
para guiar y orientar a investigadores e instituciones interesados en estudiar este tipo de especies 
de rana, así como para desarrollar estrategias para recuperar su hábitat y repoblar la zona. 
Además, esta información podría ser de ayuda en la toma de decisiones por parte de las 
autoridades competentes en el manejo y conservación de la especie, contribuyendo así a su 
protección y previniendo su extinción. 
La investigación planteó y expuso la siguiente hipótesis: “El tipo de dieta y temperatura 
adecuada influyen en el desarrollo larvario de Ranitomeya Sirensis”. Para lograr lo indicado, 
se plantearon los siguientes objetivos de investigación. 
Objetivo general 
- Evaluar la influencia de las dietas y temperaturas en el desarrollo larvario de la 
Ranitomeya sirensis (Anura: dendrobatidae) Tingo María- Perú. 
Objetivos específicos 
- Determinar la influencia de las dietas y temperaturas en el peso de Ranitomeya sirensis 
durante el desarrollo larvario. 
- Determinar la influencia de las dietas y temperaturas en la longitud de Ranitomeya 
sirensis durante el desarrollo larvario. 
  
3 
 
II. REVISION DE LITERATURA 
1. Marco teórico 
2.1.1. Generalidades de Ranitomeya sirensis 
2.1.1.1. Descripción general de la familia Dendrobatidae 
De acuerdo a Lombeida (1998), los dendrobátidos o ranas venenosas son 
un grupo de anfibios que ha capturado la atención científica debido a su singularidad. A pesar 
de su pequeño tamaño, este grupo de animales resulta excepcional en varios aspectos. Se 
conocen alrededor de 168 especies, variando sus dimensiones de 01 a 06 centímetros de 
longitud, sin diferencias notables entre machos y hembras, lo que contrasta con la mayoría de 
los anfibios, donde generalmente la hembra es de mayor tamaño. Además, el cortejo y el 
cuidado de las crías de estas ranas son únicos entre los anfibios. Pero lo que más destaca de este 
grupo es la producción de sustancias tóxicas defensivas, algunas de las cuales pueden ser 
mortales, que se exhiben a los posibles depredadores mediante un brillo especial en sus 
coloridas pieles. 
Aichinger (1991) describe a Ranitomeya sirensis como una rana pequeña 
con piel dorsal ligeramente granular y vientre moderadamente granular. Sus extremidades son 
lisas y presenta rayas amarillas sobre fondo negro en la cabeza y espalda, así como patas azules 
con manchas redondas negras, parche amarillo en el vientre y la barbilla. Los machos adultos 
miden alrededor de 15 a 22 mm, mientras que las hembras son un poco más grandes. Se pueden 
encontrar reproduciéndose en soportes de bambú. Aunque esta morfología se informó en los 
años ochenta y noventa, en la actualidad parece ser inquietantemente rara. 
2.1.1.2. Clasificación taxonómica  
Twomey y Brown (2008), lo clasifican así: 
Reino: Animal 
Philum: Vertebrados 
Clase: Anfibia  
Orden: Anura  
Familia: Dendrobatidae  
Género: Ranitomeya 
Especie: Ranitomeya sirensis Aichinger (1991) 
4 
 
2.1.1.3. Distribución y hábitat 
Inicialmente, Ranitomeya sirensis fue descrita como una población única 
limitada a la Cordillera El Sira en el centro de Perú, en elevaciones que oscilan entre 750 y 1560 
metros sobre el nivel del mar, según Aichinger en 1991. Sin embargo, se han registrado 
poblaciones en tierras bajas y en elevaciones de hasta 1500 msnm cerca de Tingo María. Su 
distribución fue actualizada posteriormente, reconociendo que se encuentra desde el sur hasta 
el centro de Perú, pasando por Madre de Dios, Ucayali, Bolivia y Brasil, según (Brown y 
Twomey,2011). También se encontró en la provincia de Leoncio Prado, en la región Huánuco, 
en el Bosque Reservado de la Universidad Nacional Agraria de la Selva - BRUNAS (Blas, 
2009). 
Según Von May et al. (2008), Ranitomeya sirensis se distribuye en la 
región Huánuco en elevaciones de 150 a 1400 msnm. Se encuentra en Tingo María, en Bosque 
Pluvial Premontano Tropical, que cuenta con una temperatura anual de 24°-25°C y una 
precipitación anual de 6000 a 7000 mm. La topografía del lugar es accidentada, los árboles son 
pequeños y delgados con abundantes epifitas. Estas especies se encuentran en áreas donde los 
fitotelmas son abundantes como las bromelias y xanthosomas, y de vez en cuando se observan 
en bosques de bambú, que se utilizan como fitotelmas para la reproducción (Twomey y Brown, 
2009). 
Además, existen otros morfotipos en Perú, como el morfotipo Nominal 
en la Cordillera del Sira, el morfotipo Panguana occidental en el este andino de la región de 
Panguana, el morfotipo Ucayali bajo al norte de Pucallpa y el morfotipo Biolat en las tierras 
bajas del sur de Perú (Loters et al., 2007). Según Whittaker et al. (2015), Ranitomeya sirensis 
es uno de los pocos anfibios que se sabe que habitan en los fitotelmas formados en los 
entrenudos de la caña de bambú. 
2.1.1.4. Ciclo biológico 
Una vez que los huevos de la especie de rana Ranitomeya sirensis son 
puestos, tanto los huevos como los renacuajos tienen un color blanquecino o gris. Con el tiempo, 
los huevos se desarrollarán hasta que el embrión tenga un cuerpo, cola y boca bien formados 
en la etapa 20-22. Después de la eclosión, los renacuajos eventualmente desarrollarán rayas 
amarillas en la parte superior del cuerpo y una mancha amarilla en el hocico. Luego de varias 
semanas de alimentarse en la fitotelma, los renacuajos de Ranitomeya sirensis desarrollarán 
5 
 
primero las patas traseras (entre la etapa 31 y 39 de Gosner), seguidas por las patas delanteras 
(en la etapa 41 y 42 de Gosner). Durante esta fase, dejarán de alimentarse y obtendrán los 
nutrientes necesarios a través del proceso de absorción de la cola, que suele durar entre 6 y 8 
días. Finalmente, una vez que la cola haya sido completamente absorbida, el renacuajo emergirá 
a la superficie en la etapa final de metamorfosis completa (etapa 46 de Gosner) según (Gosner, 
1960). 
Las larvas de Ranitomeya sirensis tardan aproximadamente de 60 a 70 
días para completar su metamorfosis, y esto dependerá de la temperatura del agua y el forraje. 
Estas ranas pueden vivir hasta los 5 o 6 años de edad. Después de 6 a 8 meses, los machos 
comienzan a llamar para aparearse, y después de 8 meses más, las hembras pueden poner sus 
primeros huevos. Por lo general, las hembras ponen de 2 a 3 huevos, y muy raramente ponen 4. 
Los huevos son depositados sobre la superficie vertical del agua. La actividad de estas ranas es 
mayor entre las 6:00 a.m. y las 11:00 a.m. y entre las 03:00 p.m. y las 06:30 p.m. (Blas, 2010). 
2.1.1.5. Alimentación  
Durante la fase de larva, Ranitomeya sirensis obtienen su alimento del 
fitoplancton que se encuentra en las paredes de los hospederos naturales de textura porosa, lo 
que favorece la acumulación de este tipo de alimento. También se alimentan de restos vegetales 
que caen de los bosques. Además, se benefician de la presencia de larvas de mosquitos como 
Trichoprosopon digittatum y Culex sp. en el agua estancada, y ocasionalmente de larvas 
depredadoras de mosquitos del género Toxorhynchites (Von May et al, 2009). Debido a que los 
especímenes de Ranitomeya sirensis se alimentan de larvas de mosquito, incluyendo aquellas 
que son depredadoras, durante su etapa larvaria, se les clasifica como una especie con una dieta 
tanto detritívora como predadora. Estas larvas de mosquito son una fuente significativa de 
alimento para ellos durante este periodo de desarrollo. (Brown et al, 2011). Una vez que llegan 
a la etapa adulta, la dieta principal de Ranitomeya sirensis consiste en arañas, pequeños 
gusanos, babosas y otros insectos. En casos de escasez de alimentos, las hembras pueden 
proporcionar óvulos no fertilizados ricos en proteínas como fuente de alimento opcional para 
sus renacuajos (Blas, 2010). 
 
 
 
6 
 
2.1.1.6. Estado de conservación 
Siguiendo los resultados de Brown y Twomey et al. (2011), la definición 
de Ranitomeya sirensis se ha ampliado enormemente y ahora esta especie parece tener una 
amplia distribución desde el centro de Perú hasta Bolivia. Ocurre ampliamente en los drenajes 
Ucayali, Huallaga y Madre de Dios del Perú.  Después de esta redefinición de la especie, se 
encuentra en Preocupación menor (LC) UICN y en el Apéndice II de CITES (Ministerio del 
Ambiente [MINAM] 2018). 
2.1.1.7. Usos de la especie 
En general, se reporta que los usos de la especie Ranitomeya sirensis se 
centran principalmente como mascotas, defensa y medicina. Además, se registran otros usos 
como la educación y la artesanía. El uso de mascotas es común para su exportación y uso en 
terrarios. Por otro lado, el uso de anfibios en la medicina tradicional se enfoca principalmente 
en especies del género Telmatobius (Ministerio del ambiente [MINAM] 2018a) 
2.1.2. Situación de los anfibios en el Perú 
En el Perú, se estima que hay 622 especies de anfibios, con el 97,1% perteneciendo 
al grupo de los anuros, es decir, las ranas, con un total de 602 especies (Ministerio del Ambiente 
[MINAM] 2018b), y más de la mitad de estas especies son endémicas del país. La investigación 
científica y la exploración de nuevos hábitats están llevando a la identificación de más especies 
de anfibios en áreas inexploradas o de gran interés. El Neotrópico es un área clave en la 
evolución de los anfibios debido a su geografía, variables climáticas y hábitats que han llevado 
a la especiación y la creación de nuevas especies. Según Santos et al. (2009), los Andes son una 
de las zonas clave para la diversificación de los anfibios en el Neotrópico. Además, en el Perú, 
se utilizan los anfibios principalmente como mascotas, para alimentación y medicina 
tradicional, así como también en educación y artesanía. 
Aunque en Perú la diversidad de anfibios es alta gracias a los avances científicos, 
a nivel mundial el panorama es preocupante. El impacto humano, la pérdida de hábitats 
naturales, las amenazas biológicas, como la invasión de especies (Aguilar et al., 2010) y los 
hongos patógenos, están afectando negativamente a los ecosistemas y disminuyendo las 
poblaciones de anfibios. El tráfico ilegal también tiene un fuerte impacto en la ecología y 
promueve la sobreexplotación de las especies, lo que puede llevar a la introducción de especies 
7 
 
exóticas y afectar los ecosistemas. Se estima que las especies exóticas son la segunda causa de 
pérdida de biodiversidad en el mundo (Urbina y Castro, 2010). Además, los brotes de patógenos 
como el hongo Batrachochytrium dendrobatidis (BD) han llevado a la extinción o disminución 
de poblaciones de anfibios en varios países, incluyendo Ecuador, Nueva Zelanda y España. 
(Quintero et al., 2013). 
El estado de conservación de las especies de anfibios en el Perú ha sido impactado 
negativamente por diversos factores, lo que ha llevado a que 492 especies hayan sido 
clasificadas en la Lista Roja de Especies Amenazadas de la UICN según Jarvis et al. (2015). 
De estas especies, 111 son consideradas como Amenazadas, de las cuales 69 están clasificadas 
como En Peligro Crítico o En Peligro, mientras que otras 140 especies tienen una clasificación 
de Deficiente en Datos. 
Las especies de anfibios en el Perú son consideradas de alto valor estético y han 
sido objeto de intensa depredación por la recolección y el comercio ilegal, tanto para el consumo 
humano como para la venta como mascotas. Según el Servicio Nacional Forestal y Fauna 
Silvestre (2018) una de las familias de anfibios más amenazadas es la Dendrobatidae, que 
representa el 8% de las 120 especies categorizadas como amenazadas. Además, las poblaciones 
de ranas venenosas nativas del género Ranitomeya, Allobates y Atelopus son particularmente 
vulnerables al contrabando de animales vivos. Según Hidalgo et al. (2019), durante los últimos 
diez años, el SERFOR ha confiscado más de 60,000 animales en todo el país, siendo las boas 
mantonas, tortugas motelo y caimanes blancos los animales más comúnmente confiscados. En 
el año 2019, solo la región Huánuco confiscó 652 animales, lo que la convierte en el octavo 
departamento con más confiscaciones en todo el país. Según Brown et al. (2011), los 
agricultores locales presenciaron una venta de 900 especímenes de Ranitomeya sirensis en una 
sola oportunidad en la zona de Divisoria al este de Tingo María, con fines comerciales de 
mascotas. 
2.1.3. Manejo de dendrobátidos para la conservación 
Los dendrobátidos requieren ambientes acuáticos para la reproducción, 
depositando sus huevos y larvas en cuerpos de agua que se forman por la acumulación de la 
lluvia en bosques tropicales. Estos cuerpos de agua están presentes en cavidades de organismos 
vegetales conocidos como fitotelmas, que pueden ser bromelias, cavidades de árboles o 
8 
 
entrenudos de especies de bambú. Es importante considerar estos factores para el manejo 
adecuado de los dendrobátidos y garantizar su desarrollo óptimo (Arista, 2020). 
2.1.3.1. Manejo de dendrobátidos in situ o raching artificial 
Se entiende por manejo de dendrobátidos in situ o en libertad, al método 
conocido como ranching artificial, el cual consiste en el uso de herramientas artificiales 
complementarias para el manejo de estas especies en su hábitat natural. En el caso de los 
dendrobátidos, se utilizan hospederos artificiales que emulan las condiciones de las fitotelmas 
tales como tubos de PVC o botellas plásticas. El WORLD BANK (2003) sugirió un plan que 
se centra en fomentar proyectos para la cría de ranas venenosas con el objetivo de reducir la 
pobreza utilizando una técnica de crianza patentada por el Dr. Rainer Schulte, denominada 
ZIRA (Zoocriadero Intensivo con Rancheo Artificial). Esta técnica consiste en colocar 
criaderos artificiales en los árboles en el hábitat natural de las ranas. Los sitios artificiales, que 
se crean utilizando botellas de plástico de refrescos cortadas por la mitad y llenas de agua, 
mejoran significativamente el éxito de la cría, ya que las ranas depositan sus huevos en ellos. 
El excedente de renacuajos puede recolectarse de las botellas y trasladarse a jaulas de cultivo 
en el bosque. Es transcendental que estos sistemas se instalen en sitios fijos para evadir 
confusiones en el cuidado parental de los individuos que ya son adultos y que puedan trasladarse 
entre los hospederos que habiten.  
El uso del método de rancheo artificial no solo garantiza la supervivencia 
de especies de anfibios que enfrentan amenazas constantes como el tráfico de fauna silvestre y 
la limitada distribución, sino que también puede ser una herramienta para fomentar la 
implementación de opciones de biocomercio sostenible (Yeager et al. 2020 citado por Arista, 
2020). 
2.1.3.2. Manejo de dendrobátidos ex situ 
Una estrategia para la conservación de especies es el manejo en 
cautiverio o ex situ, que se lleva a cabo en condiciones controladas para mejorar la 
supervivencia de los animales. Según Carrillo (2007), el éxito de esta estrategia se debe a que 
se pueden proporcionar mejores condiciones de desarrollo que en su estado natural. Estas 
prácticas en cautiverio tienen múltiples objetivos, como fines educativos, turísticos, programas 
de reintroducción, investigación o preservación de especies, como señalan Poole y Grow 
(2008). 
9 
 
Según Pough (2007), la mayoría de las especies de anfibios nunca han 
sido criadas en cautiverio o reproducidas en esta condición. No obstante, gracias al avance 
científico y la implementación de técnicas de manejo adecuadas, se ha logrado crear un 
ambiente similar al natural donde habitan los anfibios, lo que permite la reproducción de ciertas 
especies. Esta estrategia es una herramienta importante para la conservación de especies en 
peligro de extinción. 
Se entiende por manejo de dendrobátidos en cautiverio o ex situ el 
cuidado de los especímenes en un ambiente artificial, como terrarios, frascos plásticos, o algún 
otro material que pueda mantener las condiciones adecuadas de pH, temperatura y humedad 
para su óptimo desarrollo, según lo indicado por Poole y Grow (2008). 
2.1.4. Temperatura 
Poole y Grow (2008), afirman que mantener una temperatura adecuada es una de 
las consideraciones más críticas para el bienestar general de los anfibios. Debido a que son 
ectotermos, los anfibios no pueden producir suficiente calor corporal por sí mismos y, por lo 
tanto, dependen de las condiciones ambientales y de su comportamiento, como la exposición 
solar o la hibernación, para alcanzar los requerimientos térmicos necesarios.  
Brattström (1963), establece que los anfibios son ectotermos, lo que significa que 
carecen de un sistema eficaz para regular su temperatura corporal. Esta limitación los hace 
altamente dependientes de la temperatura ambiental para su crecimiento y desarrollo. Además, 
la temperatura es un factor importante que afecta tanto el tamaño como la edad en la que los 
anfibios completan su metamorfosis. Smith-Gill y Berven (1979), indican que las bajas 
temperaturas pueden retrasar el crecimiento, prolongando la etapa de crecimiento de un anfibio 
y afectando su tamaño final. 
En los anfibios es importante considerar el microhábitat del hábitat natural de cada 
especie de anfibio. Algunas especies pueden vivir en microhábitats que difieren de lo esperado 
en función de la ubicación geográfica. Por ejemplo, las especies de clima templado suelen 
encontrarse en rangos de temperatura entre 18 y 24°C, pero pueden requerir temperaturas más 
frescas o períodos de torpor durante el otoño y el invierno (Poole y Grow, 2008). 
Según Whitaker (2001), las ranas tropicales de tierras bajas deben mantenerse a 
una temperatura de entre 24 y 30 grados Celsius, mientras que las ranas tropicales de montaña 
estarán más cómodas con temperaturas de entre 18 y 24 grados Celsius. Por otro lado, los 
10 
 
huevos y las larvas de la mayoría de los hilidos y dendrobatidos neotropicales pueden 
mantenerse a una temperatura de entre 25 y 27 grados Celsius, tal y como señalan Cover et al. 
(1994) y Whitaker (2001). Es importante mantener estas temperaturas para asegurar el bienestar 
y desarrollo adecuado de los anfibios 
2.1.5. Dietas 
Aguiar (2013) señala que la dieta es un factor crucial en el desarrollo de todas las 
especies animales. Aunque no hay una dieta específica para renacuajos de anfibios, se suele 
suplir esta necesidad con dietas comerciales, especialmente diseñadas para peces ornamentales. 
Es importante destacar que se deben cumplir con los requerimientos fisiológicos específicos de 
la especie en cuestión. En el caso de los anfibios criados en cautiverio, se debe proporcionar 
una dieta cuidadosamente planificada en cuanto a su composición. La proporción de proteínas 
en el alimento suministrado a los renacuajos es importante, pero también deben considerarse la 
cantidad de grasas, fibra, humedad y cenizas, ya que, en conjunto, estos factores pueden afectar 
el crecimiento de los renacuajos. Sin embargo, es necesario tener cuidado para evitar problemas 
de obesidad. 
De acuerdo con Poole y Grow (2008), para garantizar una buena salud y desarrollo 
reproductivo de los anfibios, es fundamental ofrecer una dieta que se asemeje a lo que 
consumirían en su hábitat natural y brindarles una amplia variedad de opciones alimenticias. Si 
los anfibios no reciben una nutrición adecuada, pueden presentar problemas de desarrollo y 
reproducción, así como enfermedades óseas metabólicas, tetania, parálisis, retraso en el 
crecimiento y, en casos graves, la muerte. 
Poole y Grow (2008) señalan que es crucial proveer a los anfibios con una dieta 
adecuada que imite lo más posible su alimentación en la naturaleza y que ofrezca una variedad 
de alimentos. La falta de nutrientes puede llevar a problemas de desarrollo y reproducción, 
enfermedades óseas metabólicas, tetania y parálisis, y a la muerte. Asimismo, es importante 
proporcionar suficiente calcio en la dieta para asegurar un desarrollo adecuado y prevenir la 
osteopenia, una enfermedad común en anfibios en cautiverio. Es esencial tener en cuenta la 
historia natural de cada especie para decidir cuándo y cuánto alimentarlos, tomando en cuenta 
los tiempos naturales de alimentación de cada animal en lugar de la conveniencia del cuidador. 
 
11 
 
2. Estado del arte 
Varios estudios han señalado que la temperatura es el factor ambiental más importante 
al que los anfibios están expuestos durante su vida, y en particular durante el proceso de su 
metamorfosis. (Smith-Gilí y Berven, 1979; Ballinger y McKinney, 1966, citado por Manjarrez, 
1994). La conducta y supervivencia de los anuros, como la, emergencia, canto y ovoposición, 
están directamente influenciados por la temperatura ambiental (Brattstrom, 1963; Seale, 1982, 
citado por Manjarrez, 1994). 
Blass (2009) al describir el manejo in situ y ex situ de la rana venenosa Ranitomeya lamasi 
de tierras bajas en temperatura ambiente (23.9 °C), tiene como registrado las longitudes de los 
renacuajos durante todo el proceso de metamorfosis (Tabla 1). Siendo las siguientes las medidas 
registradas: 
Tabla 1. Medida de longitud de Ranitomeya lamasi para la semana respectiva 
Semana 
Longitud 
promedio (cm) 
Descripción 
0 1.00 Larva recién eclosionada 
1 1.80  
2 2.30  
3 2.50 Inicio de la pigmentación característica 
4 2.70 Pigmentación característica de la especie 
5 2.80 Aparición de la membrana para la formación de patita posterior 
6 2.90 Patita posterior en desarrollo 
7 3.00 Patita posterior formada y formación de patita anterior 
8 3.10 Extremidades completas y pigmentación definida 
9 2.90 ´Perdida de la cola 
10 1.00 Metamorfosis completa 
Aguiar (2013) realizó un estudio en el que probó diferentes dietas y temperaturas durante 
el desarrollo de renacuajos de Ceratophrys stozmanni. Utilizó una dieta de alimento balanceado 
para alevines de trucha y un suplemento alimenticio para renacuajos a temperaturas de 27°C y 
30°C. Los resultados indican que tanto la calidad de la dieta como la temperatura influyen en 
el crecimiento de los renacuajos, pero hay pocos datos sobre su efecto en el tiempo de 
metamorfosis. Se encontró que el efecto de la dieta depende de la temperatura, y que los 
12 
 
renacuajos alimentados con una dieta carnívora a 30°C alcanzaron un mayor tamaño en la 
metamorfosis que los alimentados con una dieta mayormente herbívora a la misma temperatura. 
Sin embargo, la dieta con un menor índice de proteína animal produjo un mayor tamaño de 
metamorfos a 27°C. Estas diferencias, aunque sutiles, son importantes al establecer los 
parámetros de crianza. Los datos también muestran que el peso está directamente relacionado 
con la longitud, es decir, a mayor tamaño, mayor masa ganada. Para los renacuajos de 
Ceratophrys stolzmanni, una buena opción es usar una dieta carnívora a una temperatura más 
alta (30°C). 
Ramos (2005) quien en su investigación probo diferentes temperaturas en la cría artificial 
de renacuajos de las ranas venenosas Dendrobates truncatus y Dendrobates auratus en la 
ciudad de Bogotá, Colombia. Donde estudio el desarrollo de estos renacuajos a temperatura 
ambiente (18-22 °C) y a temperatura fija de 24 °C por medio de un termostato. Este estudio 
demostró que los individuos manejados con temperatura controlada a 24°C aceleraron su 
desarrollo en comparación de los animales que se encontraban a temperatura ambiente. 
Manjarrez (1994) indica que la temperatura corporal preferida por los animales en 
condiciones naturales puede diferir de la temperatura preferida en un ambiente controlado de 
laboratorio. Por lo tanto, es importante tener precaución al utilizar los términos "intervalo de 
termoactividad" y "preferido". 
En el estudio realizado por Alarcón et al. (2011) sobre Ranitomeya lamasi, se utilizó 
terrarios de cristal con puerta frontal y buena ventilación de tamaño 30x30x30 para la crianza 
ex situ de esta especie. Los investigadores describieron la tabla de vida, la curva de crecimiento 
y el ciclo biológico de la especie, encontrando que el tamaño promedio semanal de la especie 
era menor en comparación con otros estudios realizados (Tabla 2). Siendo las medidas 
registradas las siguientes: 
Tabla 2. Medida de longitud de los renacuajos para la semana respectiva 
Edad Longitud promedio (cm) 
0 semana 1.00 
1era semana 1.40 
2da semana 1.60 
3era semana 1.70 
4ta semana 2.10 
13 
 
5ta semana 2.20 
6ta semana 2.40 
7ma semana 2.80 
 
Gil (2017) en su investigación de desarrollo de un programa nutricional para 
Dendropsophus padreluna y Rheobates palmatus, concluye que es necesario contar con 
alimentos con buen contenido proteico, sin embargo, recomienda adicionar a la dieta 
complementos y suplementos nutricionales. 
La Marca y Castellanos (2018) sugieren que los renacuajos son principalmente herbívoros 
y su alimentación se basa en algas que se adhieren a diferentes superficies. Tienen un tracto 
intestinal largo y simple con un estómago rudimentario y grandes intestinos en espiral que son 
más adecuados para digerir material vegetal. Sin embargo, los renacuajos también necesitan 
proteínas para crecer, aunque las obtienen de fuentes distintas a la carne o sus derivados. Una 
vez que las patas traseras crecen, necesitan fuentes ricas en proteínas para completar su 
desarrollo y calcio para fortalecer sus huesos en desarrollo. Algunas fuentes de proteínas en 
esta etapa son los nemátodos, los huevos de invertebrados y los restos de invertebrados. 
  
14 
 
III. MATERIALES Y MÉTODOS 
1. Lugar de ejecución 
3.1.1. Ubicación política 
La colecta de especímenes y recopilación de información del presente trabajo de 
investigación se realizó en el área de mayor presencia de bambú del Bosque Reservado de la 
Universidad Nacional Agraria de la Selva (BRUNAS), mientras que la ejecución de la 
investigación se realizó en un ambiente acondicionado para los terrarios, ambos ubicados en el 
distrito de Rupa Rupa, Provincia Leoncio Prado, Región Huánuco. 
3.1.2. Ubicación geográfica 
Según la clasificación de las regiones naturales del Perú establecida por Javier 
Pulgar Vidal, tanto la zona BRUNAS como el ambiente acondicionado para terrarios 
pertenecen a la Selva Alta o Rupa Rupa. El BRUNAS está situado geográficamente en las 
coordenadas UTM Este 390756 y Norte 8970475, mientras que este ambiente acondicionado 
se encuentra en las coordenadas UTM Este 390209 y Norte 8969675. 
3.1.3. Zona de vida y clima 
Holdidge (1987) clasifica la zona ecológica de acuerdo con las zonas de vida o 
formaciones vegetales del mundo y el diagrama bioclimático, como bosque muy húmedo - pre 
montano tropical (bmh. PT). La Estación Meteorológica José Abelardo Quiñones de la 
Universidad Nacional Agraria de la Selva (2017) proporciona datos que indican que las 
condiciones climáticas del área de estudio presentan una temperatura máxima de 30,5 °C, una 
temperatura mínima de 20,7 °C y una temperatura media anual de 25,6 °C. Además, la zona 
tiene una alta pluviosidad con una precipitación anual promedio de 3758,1 mm y una humedad 
relativa del 84%. 
3.1.4. Fisiografía 
Se colectó la especie en un área que presenta un rango altitudinal de 667 a 1,092 
metros sobre el nivel del mar, y se identificaron tres unidades fisiográficas bien definidas: 
Colina Baja, que ocupa 22.91 hectáreas, Colina Alta, que es la geoforma más extensa con 
150.74 hectáreas, y la zona montañosa de 43.57 hectáreas, conocida como Cerro Cachimbo 
debido a su falta de vegetación arbórea. El BRUNAS tiene una pendiente promedio del 70.74%, 
15 
 
con más del 25% de la zona calificada como una zona de protección (Puerta, 2007;Puerta, 
2012). 
3.1.5. Composición arbórea 
Alberga en su interior especies arbóreas como: huangana caspi (Senefeldera 
inclinata Franco et.al ), shiringa (Hevea brasiliensis Will), cicotria (Psychotria caerulea  R. & 
P.) , huamansamana (Jacaranda copaia (c.Mart. Ext Ad.DC)A Gentry), caimito (Pouteria 
caimito (Ruiz López- Pavón) Radlk ), cetico (Cecropia sciadophylla Martius), cumala (Virola 
pavonis (ADC) A.C. Smith), apuleya (Apuleia leiocarpa J.Vogel), moena (Nectandra 
magnoliifolia Mez), quina (Cinchona oficinalis), paliperro (Vitex pseudolea Rusby), 
machimango (Couratari macrosperma A.C.Sm), carahuasca (Guatteria modesta Diels), 
cumala (Iryanthera tricornis Ducke), moena (Persea grandis Mez), tornillo (Cedrelinga 
cateniformis Ducke (Ducke) ), papaya caspi (Jacaratia digitata Solms), entre otras (Rodríguez, 
2000).  
 La introducción de especies no maderables como el bambú en el BRUNAS y el 
Campus universitario de la UNAS. En particular, se menciona la presencia de tres especies de 
bambú, Bambusa tuldoides Munro, Gigantochloa apus (Schultes) Kurz y Dendrocalamus asper 
(Schultez f.) Backer; y se señala que es en la última donde se encuentra la Ranitomeya sirensis. 
(Yalico, 2011). 
2. Materiales y métodos 
3.2.1. Materiales y equipos 
3.2.1.1. Material biológico  
Se ha tenido como material biológico a 16 huevos de Ranitomeya sirensis 
colectados en las matas de bambu Dendrocalamus asper con coordenadas UTM Este 390209 y 
Norte 8969675 en el Bosque Reservado de la Universidad Nacional Agraria de la Selva, para 
los tratamiento contamos con alimento comercial de marca Nutrafin, como alimento vivo 
contamos con larvas de zancudo obtenidos por cultivo propio y mosca de fruta Dropsophila 
melanogaster para alimento de ranas en etapa adulta. 
 
 
 
 
16 
 
3.2.1.2. Herramientas, equipos e insumos  
Se conto con una balanza gramera digital marca Canry, para el peso, 
vernier pie de rey digital ,cámara fotográfica, lente macro, acondicionador de temperatura, 
manta térmica, termostatos, generador de energía, estabilizadores, terrarios de cristal de 
30x30x45 cm, envases plásticos, lentes de protección, guantes de nitrilo, pera de succión, 
cuchara de metal, tamizador pequeño, mortero, tubo de ensayo, material de disección, vaso 
precipitado, placas petri, lupa, regla de 10 cm, probeta, transportador de tecnopor y un 
declorificador. 
 
3.2.2. Metodología 
3.2.2.1. Tipo y nivel de investigación 
A) Tipo de investigación  
El tipo de investigación empleada es de naturaleza es aplicada; 
puesto que se acudió a las ciencias biológicas para estudiar la influencia de dietas y temperatura 
en el desarrollo larvario de Ranitomeya sirensis. 
B) Nivel de investigación 
El nivel de investigación planteada fue de tipo experimental; puesto 
que se planteó evaluar la influencia de las dietas y temperatura sobre el desarrollo larvario de 
Ranitomeya sirensis. 
C) Tipo de diseño de investigación 
Se empleó un diseño completamente al azar (DCA) con arreglo 
factorial 2A x 2B, con 4 tratamientos de constituido por la interacción de dieta y temperatura, 
con 4 repeticiones, haciendo un total de 16 unidades experimentales 
D) Técnicas estadísticas 
En el análisis estadístico realizado, se utilizó el Análisis de Varianza 
(ANVA) con un nivel de significancia del 5% para comparar los tratamientos y la prueba de 
comparación de medias Tukey también al 5% para evaluar las diferencias entre los promedios 
de las variables que seguían una distribución normal. En cambio, para las variables que no 
presentaban una distribución normal se aplicó la prueba no paramétrica Kruskal Wallis y la 
comparación múltiple de medias al 5% de significancia. 
17 
 
3.2.2.2. Población y muestra 
Para esta investigación se recolectó 16 huevos de Ranitomeya sirensis, 
colectados en 5 diferentes puntos de matas de bambú pertenecientes a la especie 
Dendrocalamus asper con coordenadas UTM 390913 E 8970141 N a 720 m.s.n.m, dentro del 
Bosque Reservado de la UNAS (BRUNAS), este número de huevos representó la población y 
muestra. 
3.2.2.3. Diseño experimental 
A) Factores en estudio 
El diseño contempla los siguientes factores y sus niveles: 
Tabla 3.  Factores en estudio 
Factores Niveles Código 
A. Temperaturas  *  
23 °C – 25.9 °C a1 
26 °C – 29 °C a2 
B. Dietas 
Alimento comercial Nutrafin b1 
Larvas de zancudo  b2 
 
* Los rangos de temperaturas fueron utilizados debido a que ranas 
tropicales de montaña desarrollan condiciones óptimas de 18–24°C (Whitaker, 2001). Los 
huevos y las larvas de la mayoría de los hilidos y dendrobatidos neotropicales pueden 
mantenerse a 25–27°C (Cover et al., 1994; Whitaker, 2001). Estas temperaturas fueron 
ligeramente adaptadas para la investigación por la referencia de datos recopilados en campo 
antes de la ejecución. 
 
* Si bien, es cierto, no hay una dieta establecida para renacuajos de anfibios, se suele suplantar 
esta necesidad con gran frecuencia con dietas de tipo comercial, siendo de gran utilidad el 
suministro de dietas para peces ornamentales Aguiar (2013); mientras que las larvas de zancudo 
es un alimento vivo que se encuentra en su habitad natural. 
 
 
18 
 
B) Tratamiento en estudio 
Los tratamientos considerados en la presente investigación fueron 
generados de la interacción de los dos factores. 
Tabla 4.  Tratamientos en estudio 
Combinaciones Descripción Tratamiento 
a1 b1 23 °C – 25.9 °C + Alimento comercial Nutrafin T1 
a1 b2 23 °C – 25.9 °C + Larvas de zancudo T2 
a2 b1 26 °C – 29 °C + Alimento comercial Nutrafin T3 
a2 b2 26 °C – 29 °C + Larvas de zancudo T4 
*Anexo D. Examen bromatológico de dietas para identificar los porcentajes de nutrientes. 
                     El experimento está distribuido de la siguiente manera: 
Tratamientos     : 04 
Repeticiones     : 04 
Unidad experimental por tratamiento  : 04 
Total de unidades experimentales  : 16 
C) Contrastación estadística 
Para la contrastación estadística de las hipótesis se plantearán: una 
nula y la otra alterna para los cuatro tratamientos aplicados en la experimentación:  
Ho: μT1 = μT2 = μT3 = μT4  
Ha: μT1 ≠ μT2 ≠ μT3 ≠ μT4 ; o al menos uno es diferente  
Ho:  Las dietas y temperaturas no tienen efecto durante el desarrollo larvario de Ranitomeya 
sirensis. 
Ha:  Las dietas y temperaturas tienen efecto durante el desarrollo larvario de Ranitomeya 
sirensis.  
Si p < 0,05 se rechaza Ho y se acepta la Ha.  
19 
 
Se realizó la prueba de normalidad "Shapiro-Wilks modificado" a 
los datos de las variables medidas, que correspondían a la longitud y pesos de los renacuajos de 
Ranitomeya sirensis, con el objetivo de determinar si estos seguían una distribución normal o 
no. 
Se llevó a cabo un análisis estadístico de los datos de las variables 
evaluadas. Para las variables que tuvieron una distribución normal, se realizó un Análisis de 
Varianza (ANVA) con un nivel de significancia del 5%, donde se compararon los promedios 
utilizando la prueba Tukey si se encontraron diferencias estadísticamente significativas (p < 
0,05).  
Para las variables que no tuvieron una distribución normal, se utilizó 
la prueba no paramétrica Kruskal-Wallis con un nivel de significancia del 5%. En caso de que 
se encontraran diferencias estadísticamente significativas (p < 0,05), se llevó a cabo la 
comparación múltiple de medias al mismo nivel de significancia. 
3.2.2.4. Desarrollo de la investigación 
A) Evaluación de la especie en campo 
Previamente a los trabajos de manera ex situ se estudió en su propio 
hábitat, para lo cual se realizó una inspección dentro del área establecido, donde existe mayor 
densidad de matas de bambúes, conformada por Dendrocalamus asper, especie de mayor 
preferencia para el habitad de Ranitomeya sirensis. 
Se estudió las características del lugar, identificando insectos que 
habitan en el medio como potencial fuente de alimento, además se tomó datos de temperatura, 
humedad, Ph, altitud y georreferenciación, básicos para lograr su manejo en cautiverio imitando 
su propio hábitat. 
B) Definición del sitio 
El gobierno peruano respondió a la declaración de la OMS de que 
COVID-19 es una pandemia, declarando una emergencia de salud en todo el territorio peruano 
e implementando restricciones para prevenir y controlar su dispersión del virus del COVID-19. 
Esto resultó en restricciones de acceso a las instalaciones de la Universidad Nacional Agraria 
de la Selva, lo que llevó a la realización del estudio en un ambiente acondicionado con los 
cuidados necesarios para la investigación, incluyendo el control de la temperatura y un 
20 
 
generador de energía para evitar posibles afectaciones a los resultados debido a interrupciones 
eléctricas. El termostato fijó la variable de temperatura dentro de los rangos de 23-25.9 °C y 
26-29 °C. 
C) Autorización de investigación científica 
Según lo establecido en la Ley Nº 29763, Ley Forestal y de Fauna 
Silvestre en el artículo 140 de la misma, y en concordancia con el numeral 134.2 del artículo 
134 del Reglamento para la Gestión de Fauna Silvestre aprobado por Decreto Supremo Nº 019-
2015-MINAGRI, la autorización para la investigación científica en especies categorizadas 
como amenazadas y especies incluidas en los Apéndices de la Convención sobre el Comercio 
Internacional de Especies Amenazadas de Fauna y Flora Silvestres (CITES) corresponde al 
SERFOR. 
Motivo por el cual se realizó la solicitud al SERFOR para la colecta 
de huevos de Ranitomeya sirensis para la realización del trabajo de investigación, siendo esta 
aprobada con RDE N° D000586-2021-MIDAGRI-SERFOR-DGGSPFFS asignándose el 
Código de Autorización N° AUT-IFS-2021-066 (Anexo C). 
D) Higiene de sitios y control de enfermedades 
Las enfermedades pueden ser transferidas desde diferentes sitios y 
situaciones en cautiverio a través de varios vectores incluyendo calzado, equipo, vehículos, y 
especímenes. Por eso durante la recolección de huevos todo el equipo fue desinfectado para cada 
sitio y en lo posible equipo específico para cada sitio. 
 
E) Colecta, manejo y procesamiento de huevos 
Durante los primeros días del mes de noviembre entre las 6:00 am a 
11:30 am se buscó los huevos de Ranitomeya Sirensis, entre las fitotelmas de las matas de 
bambu de Dendrocalamus asper a través del método VES (búsqueda por encuentro casual) 
(Crump y Scott, 1994; Toft, 1982) y REV (Relevamiento por Encuentro Visual) Rueda et al. 
(2006), que consistió en caminar de manera aleatoria buscando los individuos de la especie; 
también se utilizó los transectos auditivos, que consistió en la búsqueda de especímenes guiados 
por su canto, se optó usar este método al amanecer.  
Se colectó las puestas de los huevos sin perturbar su ambiente, 
minimizando el riesgo de diseminar patógenos. Para manejar a los huevos se usó guantes de 
21 
 
vinilo. Se usó un par nuevo de guantes por cada puesta tomando medidas de seguridad por cada 
punto. Se tomó los huevos con sumo cuidado y se seleccionó de tamaños similares, verificado 
por la presencia de embriones en estadios tempranos de desarrollo, 6 a 10 según Gosner (1960). 
Por experiencia del Dr. Rainer Schulte (comunicación personal) 2021, se descartó los huevos 
que presentaban cobertura blanquecina que indica que no son fértiles, en cambio las que 
tuvieron una envoltura translucida son fértiles. Se manipulo los especímenes lo menos posible, 
para evitar el estrés de los procedimientos prolongados. Los especímenes se colocaron en 
envases con agua de lluvia y se rotularon para luego ser transportados en un cooler. 
Se hizo la colecta de un total de 16 huevos fértiles de Ranitomeya 
sirensis. 
F) Construcción, acondicionamiento y cuidado en terrarios 
Con la ayuda de un aire acondicionado se simulo la temperatura 
promedio en la que se encuentra naturalmente Ranitomeya sirensis, se implementó dos terrarios 
de vidrio de medidas de 30x30x45 cm con ventilación, a los que se les dio condiciones de clima, 
para trabajar los intervalos de temperatura; así en el terrario 1 se mantuvo la temperatura entre 
los intervalos de 23°C-25.9°C (a1), mientras que para el terrario 2 se usó una manta térmica 
para elevar la temperatura en un intervalo de 26°C-29°C (a2), para ambos terrarios se colocó 
termostatos poder mantener las temperaturas  empleadas en la investigación. 
Una vez eclosionado los huevos en estadio 21 (Tabla Gosner), se 
utilizó envases de tipo frasco de material polietileno, para cada individuo, se adicionó con la 
ayuda de un vaso precipitado 50 ml de agua a temperatura ambiente para cada frasco, sin 
clorificar. Por recomendación del Dr. Reiner Schulte (comunicación personal) 2021, se usó 
Terminalia catappa seca, que es una especie comúnmente llamada falsa castaña o almendra 
para dar condiciones al agua como antibacteriano y control de pH entre 6-7.  
De esta forma se colocaron en el terrario con temperatura a1 a ocho 
renacuajos y en el terrario con la temperatura a2 a los ocho renacuajos restantes. De cada grupo 
de ocho se dividió en dos grupos de cuatro renacuajos para alimentarlos con sus respectivas 
dietas experimentales. 
La temperatura fue registrada con el apoyo de un termohigrómetro, 
se controló la temperatura dos veces por día. 
22 
 
Por otro lado, se hizo recambio del 30% del agua de los renacuajos 
3 veces por semana dejándola reposar a temperatura ambiente, es importante la temperatura del 
agua puesto que, si no se toma consideraciones, puede haber un desbalance térmico al momento 
de cambio de agua, que provocaría un shock termino, afectando al desarrollo correcto de los 
mismos e incluso provocando su muerte.   
G) Alimentación y dietas 
En la primera dieta alimenticia se usó un alimento comercial de la 
marca Nutrafin para alevines, si bien dentro de su línea no tienen un alimento para renacuajos, 
este producto alimento para alevines sirvió por sus gránulos pequeños, apropiados para el 
tamaño de la especie y por su contenido proteico. 
Para la segunda dieta se usó larvas de zancudo, este alimento se 
determinó por la constante observación en su estado natural, dentro de sus posadas se encontró 
larvas de zancudo y otros insectos pequeños que son devorados por los renacuajos. 
El alimento se brindó dos veces por día (mañana y noche), en horas 
de la mañana previamente recambio de agua y observaciones. Para esto se dosificó 5 gramos 
de cada dieta para cada uno de los tratamientos en evaluación. 
La alimentación se realizó una vez que alcanzaron el estadio 21 en 
adelante hasta que sean metamorfos, ya que en esta etapa no se les provee alimento pues se 
alimentan por acción de la reabsorción de la cola casi en su totalidad. 
H) Cultivo de larvas de zancudo 
Dentro de un envase de 20 litros de agua limpia se vertió el contenido 
de una botella (625 ml) de cultivo de Paramecio Paramecium caudatum.y una porción de 
diluida de hígado de pollo; esto sirvió para atraer a los zancudos para poder posarse y poner sus 
huevos, se cubre solo el 70% del envase para que ingrese los zancudos y se dejó en un ambiente 
seco y oscuro. Posteriormente al cuarto día se observó las puestas y eclosión; finalmente se 
recolectó mediante una pera de succión y un tamizador las larvas de zancudos, estos se 
guardaron paran alimentar así vivas e incentivar la caza en los renacuajos. Cuando se obtuvo 
cantidades sustanciales de cultivo se deshidrató las larvas de zancudo, obteniéndose así 
alimento por varios días, sin correr el riesgo de que las larvas de zancudo terminaran el proceso 
de su metamorfosis. 
23 
 
I) Mantenimiento de metamorfos 
Mientras los individuos de Ranitomeya sirensis fueron completando 
su proceso de metamorfosis, se colocó solo 10 ml de cantidad de agua en los envases y una 
piedra de río, por instinto escalaron la piedra fuera del agua para respirar. 
3.2.2.5. Variables evaluadas 
Se establece el monitoreo de la estimación del crecimiento y desarrollo 
en este caso iniciando con la medición de la longitud de los renacuajos, la cual fue evaluado 
con un vernier digital; peso, evaluada con una balanza gramera digital; y las observaciones se 
recolectaron con fotografías una vez por semana empezando cuando el huevo eclosione, 
culminando en la última fase de la metamorfosis. 
Para lo cual con una cuchara se recolectó al renacuajo con sumo cuidado 
para no generar estrés y se coloca sobre la balanza gramera digital para determinar peso y con 
la ayuda de un vernier digital se tomó la longitud en milímetros. La toma de datos se realizó 
una vez por semana, mientras que diariamente se realizó el control de la temperatura y se 
registró alguna información que se pudo observar. 
Toda manipulación durante la investigación se realizó con guantes de 
nitrilo sin polvillo, ya que la especie posee en su cuerpo sustancias toxicas que podría causar 
lesiones a la piel, los guantes son apropiados para la piel de las ranas; como también se usó 
lentes para la protección. 
3.2.2.6. Actividades posteriores a la investigación. 
Conforme a lo indicado en la autorización de investigación científica, 
siendo esta aprobada con RDE N° D000586-2021-MIDAGRI-SERFOR-DGGSPFFS 
asignándose el Código de Autorización N° AUT-IFS-2021-066, cuando los individuos de 
Ranitomeya sirensis, completaron su proceso de metamorfosis estas se convirtieron en ranas 
juveniles. Para estos se les acondicionó un terrario en el que se les colocó moscas de fruta 
(Drosphila sp.) para que despertando así el instinto natural de caza. 
Para el cultivo de Drosophila sp, se realizó una pasta que sirvió de 
alimento para las larvas las moscas de fruta, con los siguientes ingredientes: levadura, pure de 
papa, frutas; estos se licuaron y vertieron en un recipiente, así mismo se colocó un poco de 
24 
 
viruta para que la mosca pose sus huevos, seguidamente se transformen en larvas y finalmente 
al cabo de 7 días estas son convertidas en moscas. 
Se fueron capturando las moscas del envase y fueron colocados por 50 
segundos en la nevera; con el fin de inmovilizar y aturdir a las moscas. Finalmente se vertieron 
al terrario a la vista de las ranas, y pasado unos segundos las moscas empezaron a avivarse. 
Estas moscas sirvieron de alimento para las ranas juveniles que estuvieron una semana en el 
terrario y finalmente introducidas en su habitad para su liberación en diferentes puntos de matas 
de bambú de Dendrocalamus asper en el Bosque Reservado de la Universidad Nacional Agraria 
de la Selva. 
  
25 
 
IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 
1. Peso de Ranitomeya sirensis por influencia de dietas y temperaturas 
Después de evaluar los datos de la variable pesos de Ranitomeya sirensis durante 10 
semanas, se realizó la prueba de normalidad utilizando el método de "Shapiro-Wilks 
modificado" con un nivel de significancia de α = 0,05. Los resultados indicaron que los valores 
p superiores a 0,05 indican que los datos siguen una distribución normal, por lo que se debe 
utilizar el análisis de varianza. Sin embargo, aquellos valores p inferiores a 0,05 no siguen una 
distribución normal, y se deben aplicar pruebas no paramétricas en su lugar (Tabla 5). 
Tabla 5. Prueba Shapiro-Wilks de la variable peso  
Variable N Media (g) D.E. W* p (Unilateral D) 
Semana 0 16 0.02 0.01 0.58 <0.0001 * 
Semana 1 16 0.06 0.01 0.86 0.0400 * 
Semana 2 16 0.18 0.01 0.88 0.0672 ns 
Semana 3 16 0.31 0.04 0.83 0.0087 * 
Semana 4 16 0.41 0.06 0.87 0.0591 ns 
Semana 5 16 0.43 0.05 0.85 0.0177 * 
Semana 6 16 0.53 0.04 0.83 0.0087 * 
Semana 7 16 0.51 0.04 0.82 0.0063 * 
Semana 8 16 0.55 0.06 0.89 0.1020 ns 
Semana 9 16 0.62 0.07 0.72 <0.0001 * 
Semana 10 16 0.60 0.02 0.97 0.9084 ns 
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05, son datos que no siguen una distribución normal 
ns : no existe significancia estadística a un nivel de α = 0,05, son datos que si siguen una distribución normal 
Se utilizó la prueba no paramétrica Kruskal-Wallis para los datos de la variable pesos de 
las semanas 0, 1, 3, 5, 6, 7 y 9, ya que no seguían una distribución normal. Mientras que para 
los datos de las semanas 2, 4, 8 y 10, que sí seguían una distribución normal, se empleó el 
análisis de varianza (ANVA). Por lo que en la Tabla 06 muestra el resumen de las pruebas 
Kruskal-Wallis y ANVA para las diez semanas de evaluación de la variable pesos por influencia 
de los dos factores (temperatura y dietas) y su interacción, encontrándose significancia solo en 
el en  la semana 3, semana 8 y semana 10. 
26 
 
Tabla 6. Resumen de prueba Kruskal-Wallis y ANVA de la variable peso. 
Semana 
Distribución de 
datos 
Prueba 
estadística 
Factor p-valor 
Sig. 
(0.05) 
Semana 0 No paramétrico Kruskal-Wallis 
A (Temperatura) 0.6084 ns 
B (Dietas) >0.9999 ns 
AxB (Tratamientos) 0.8013 ns 
Semana 1 No paramétrico Kruskal-Wallis 
A (Temperatura) 0.5061 ns 
B (Dietas) 0.1699 ns 
AxB (Tratamientos) 0.1590 ns 
Semana 2 Paramétrico ANVA 
A (Temperatura) 0.1827 ns 
B (Dietas) 0.1827 ns 
AxB (Tratamientos) 0.3644 ns 
Semana 3 No paramétrico Kruskal-Wallis 
A (Temperatura) 0.0413 * 
B (Dietas) 0.4970 ns 
AxB (Tratamientos) 0.0725 ns 
Semana 4 Paramétrico ANVA 
A (Temperatura) 0.1255 ns 
B (Dietas) 0.3004 ns 
AxB (Tratamientos) 0.1072 ns 
Semana 5 No paramétrico Kruskal-Wallis 
A (Temperatura) 0.3392 ns 
B (Dietas) 0.5866 ns 
AxB (Tratamientos) 0.0969 ns 
Semana 6 No paramétrico Kruskal-Wallis 
A (Temperatura) 0.3125 ns 
B (Dietas) 0.1874 ns 
AxB (Tratamientos) 0.3677 ns 
Semana 7 No paramétrico Kruskal-Wallis 
A (Temperatura) 0.0733 ns 
B (Dietas) 0.1441 ns 
AxB (Tratamientos) 0.1173 ns 
Semana 8 Paramétrico ANVA 
A (Temperatura) 0.5554 ns 
B (Dietas) 0.0461 * 
AxB (Tratamientos) 0.0183 * 
Semana 9 No paramétrico Kruskal-Wallis 
A (Temperatura) 0.7380 ns 
B (Dietas) 0.0953 ns 
AxB (Tratamientos) 0.3729 ns 
Semana 10 Paramétrico ANVA 
A (Temperatura) 0.0185 * 
B (Dietas) 0.0334 * 
AxB (Tratamientos) 0.2843 ns 
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
Se observa que en la semana 3 solo existe significancia estadística en el factor A 
(Temperatura); asimismo en la semana 8 existe significancia estadística en el factor B (Dietas) 
27 
 
y la interacción de los factores AxB (Tratamientos); Y en la semana 10 solo existió significancia 
estadística en los factores A (Temperatura) y B (dietas) (Tabla 6). 
Se evidencia la prueba de comparación múltiple de medias en la semana 3 para los niveles 
del factor A (temperatura), encontrándose que el nivel a2 con temperaturas de 26°C a 29 °C se 
obtienen mayor peso de renacuajos de Ranitomeya sirensis (Tabla 7). 
Tabla 7. Comparación múltiple de medias (α = 0,05) del factor temperatura en la semana 3. 
Niveles Media (g) Rank Significancia 
a2 (26-29 °C) 0.3362 11 a  
a1 (23-25.9 °C) 0.2875 6  b 
Letras distintas presentan significancia estadística para (p<=0,05). 
Se evidencia que el test de Tukey en la semana 8 para los niveles del factor B (dietas), 
encuentra que en el nivel b1 con la dieta de alimento comercial se obtiene mayor peso de 
renacuajos de Ranitomeya sirensis (Tabla 8). 
Tabla 8. Test de Tukey (α = 0,05) del factor dietas en la semana 8. 
Niveles Medias (g) E.E. Significancia 
b1 (alimento comercial Nutrafin) 0.5737 0.0175 a  
b2 (larvas de zancudo) 0.5188 0.0175  b 
Letras distintas presentan significancia estadística para (p<=0,05). 
La alimentación con comida comercial produce un mayor aumento de peso en los 
renacuajos. Según Aguiar (2013), aunque no hay una dieta específica para los renacuajos de 
anfibios, generalmente se utiliza una dieta comercial para peces, ya que las necesidades 
fisiológicas son satisfechas para Ranitomeya sirensis. 
Poole y Grow (2008) sostienen que los anfibios deben ser alimentados con una dieta que 
se asemeje lo más posible a su alimentación en la naturaleza, y se les debe ofrecer la mayor 
variedad de alimentos posible. La falta de una alimentación adecuada para los anfibios puede 
provocar problemas en su desarrollo, así como en su capacidad reproductiva y enfermedades 
metabólicas óseas, que pueden ocasionar tetania, parálisis, fallas en el desarrollo y, en algunos 
28 
 
casos, la muerte. Sin embargo, en la investigación se evidencia que el alimento comercial 
registra mayores pesos que la dieta larvas de zancudo, siendo esta última con lo que se alimenta 
en su habitad natural. 
Se muestra el test de Tukey en la semana 8 para la interacción de los niveles del factor A 
(temperatura) y factor B (dietas), encontrándose que en el Tratamiento 1, conformado por la 
interacción del nivel a1 (Temperatura de 23°C a 25.9°C) y b1 (alimento comercial) se registra el 
mayor peso de renacuajos de Ranitomeya sirensis (Tabla 9). 
Tabla 9. Test de Tukey (α = 0,05) de la interacción de los factores temperatura y dietas en la 
semana 8. 
Factor A Factor B Trat. Medias (g) E.E. Significancia 
a1 (23-25.9 °C) b1 (alimento comercial Nutrafin) T1 0.6000 0.0247 a  
a2 (26-29 °C) b2 (larvas de zancudo ) T4 0.5600 0.0247 a b 
a2 (26-29 °C) b1 (alimento comercial Nutrafin) T3 0.5475 0.0247 a b 
a1 (23-25.9 °C) b2 (larvas de zancudo ) T2 0.4775 0.0247  b 
Letras distintas presentan significancia estadística para (p<=0,05). 
Asimismo, se registra que el Tratamiento 1 (T1), el cual es conformada por la interacción 
del nivel a1 (23-25.9 °C) y b1 (alimento comercial); mostrando la dieta alimento comercial un 
efecto positivo de durante el transcurso de la metamorfosis, exponiendo así que es importante 
durante el desarrollo e incremento de la variable peso de los renacuajos de Ranitomeya sirensis 
dado que contiene el adecuado contenido proteico para su desarrollo tal como lo indica Gil 
(2017). 
Se muestra el Test de Tukey en la semana 10 para los niveles del factor A (temperatura), 
encontrándose que el nivel a2 con la temperatura de 26°C a 29°C se obtienen mayor peso en 
ranas de Ranitomeya sirensis (Tabla 10). 
Tabla 10. Test de Tukey (α = 0,05) del factor temperatura en la semana 10. 
Niveles Medias (g) E.E. Significancia 
a2 (26-29 °C) 0.6125 0.0055 a  
a1 (23-25.9 °C) 0.5913 0.0055  b 
Letras distintas presentan significancia estadística para (p<=0,05). 
29 
 
En la semana 10 cumpliendo su ciclo de metamorfosis de las Ranitomeya sirensis, se 
evidencia que con la temperatura de 26-29 °C se obtienen ranas de mayor peso que con la 
temperatura de 23-25.9 °C. Siendo resaltante que, en la cría en cautiverio de los renacuajos, en 
estos intervalos de temperatura se obtendrán ranas de mayor peso, tal como lo indica Aguiar 
(2013) y Ramos (2005), Mantener una temperatura constante es crucial para el correcto 
desarrollo de los renacuajos, ya que son organismos ectotermos y no pueden producir grandes 
cantidades de calor corporal por sí mismos. Según Poole y Grow (2008), los renacuajos 
dependen de la temperatura externa para regular su temperatura corporal. 
Así también, el test de Tukey en la semana 10 para los niveles del factor B (dietas), 
encontrándose que en el nivel b1 con la dieta de alimento comercial se obtienen mayor peso en 
ranas de Ranitomeya sirensis (Tabla 11). 
Tabla 11. Test de Tukey (α = 0,05) del factor dietas en la semana 10. 
Niveles Medias (g) E.E. Significancia 
b1 (alimento comercial Nutrafin) 0.6112 0.0055 a  
b2 (larvas de zancudo) 0.5925 0.0055  b 
Letras distintas presentan significancia estadística para (p<=0,05). 
La dieta de alimento comercial registra ranas de Ranitomeya sirensis con mayor peso 
culminado su metamorfosis. Aguiar (2013) enfatiza la importancia de proporcionar una dieta 
cuidadosamente formulada para los anfibios criados en cautiverio, prestando especial atención 
a la composición del alimento. Además del porcentaje de proteína, es crucial considerar los 
niveles de grasa, fibra, humedad y cenizas en conjunto, ya que estos pueden influir 
significativamente en el crecimiento de los renacuajos. La composición de la dieta es un factor 
crítico que debe ser estudiado cuidadosamente para asegurar el adecuado desarrollo de los 
anfibios. Siendo que, la dieta de alimento comercial contiene mayor porcentaje de proteína, 
materia seca, grasa y ceniza, que la dieta larvas de zancudo, por lo que refleja mayor peso al 
final de la metamorfosis en Ranitomeya sirensis criadas en cautiverio. 
Asimismo, en su estudio, La Marca y Castellanos (2018) destacan la importancia de la 
proteína en el crecimiento de los renacuajos y señalan que deben obtenerla de fuentes diferentes 
a la carne o sus derivados. Una vez que las patas traseras de los renacuajos han crecido, 
necesitan fuentes ricas en proteínas para completar su desarrollo y para fortalecer sus huesos en 
30 
 
desarrollo necesitan calcio. Algunas de las fuentes de proteínas recomendadas durante esta 
etapa incluyen nematodos, huevos de invertebrados y restos de invertebrados. Por lo que, en la 
presente investigación se demuestra que el alimento comercial Nutrafin aporta la cantidad 
necesaria para el mayor desarrollo de Ranitomeya sirensis. 
2. Longitud de Ranitomeya sirensis por influencia de dietas y temperaturas 
Después de evaluar la variable longitud de Ranitomeya sirensis durante 10 semanas, se 
realizó una prueba de normalidad utilizando la prueba estadística "Shapiro-Wilks modificado" 
con un nivel de significancia de α = 0,05. Se encontró que los datos con "valores p" superiores 
a 0,05 indican una distribución normal y se aplicó el análisis de varianza. En cambio, los datos 
con "valores p" inferiores a 0,05 no tienen una distribución normal, por lo que aplicó la prueba 
no paramétrica (Tabla 12). 
Tabla 12. Prueba Shapiro-Wilks de la variable peso. 
Variable n Media D.E. W* p (Unilateral D) 
Semana 0 16 10.53 0.05 0.56 <0.0001 * 
Semana 1 16 14.96 0.67 0.81          0.0033 * 
Semana 2 16 20.47 0.82 0.87 0.0584 ns 
Semana 3 16 25.28 1.13 0.94 0.5115 ns 
Semana 4 16 27.62 1.81 0.91 0.2449 ns 
Semana 5 16 29.33 1.85 0.96 0.7902 ns 
Semana 6 16 30.27 1.68 0.9 0.1494 ns 
Semana 7 16 30.77 1.59 0.96 0.7934 ns 
Semana 8 16 31.66 1.47 0.88 0.0732 ns 
Semana 9 16 30.13 1.25 0.87 0.0561 ns 
Semana 10 16 10.94 0.47 0.87 0.0633 ns 
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05, son datos que no siguen una distribución normal 
ns : no existe significancia estadística a un nivel de α = 0,05, son datos que si siguen una distribución normal 
Debido a que los datos de las semanas 0 y 1, no siguen una distribución normal se utilizó 
la prueba no paramétrica Kruskal-Wallis para los datos de la variable pesos. Por otro lado, los 
datos de las semanas 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9 y 10 si siguen una distribución normal se empleó el 
análisis de varianza (ANVA). Por lo que en la Tabla 09 muestra el resumen de las pruebas 
Kruskal-Wallis y ANVA para las diez semanas de evaluación de la variable pesos por influencia 
31 
 
de los dos factores (temperatura y dietas) y su interacción, encontrándose significancia solo en 
el en  la semana 3, semana 8 y semana 10 (Tabla 13). 
 
Tabla 13. Resumen de prueba Kruskal-Wallis y ANVA de la variable longitud. 
Semana 
Distribución de 
datos 
Análisis 
estadístico 
Variables p-valor 
Sig. 
(0.05) 
Semana 0 No paramétrico Kruskal-Wallis 
A (Temperatura) >0.9999 ns 
B (Dietas) 0.0769 ns 
AxB (Tratamientos) 1.1718 ns 
Semana 1 No paramétrico Kruskal-Wallis 
A (Temperatura) 0.1660 ns 
B (Dietas) 0.0765 ns 
AxB (Tratamientos) 0.1177 ns 
Semana 2 Paramétrico ANVA 
A (Temperatura) 0.0682 ns 
B (Dietas) 0.0229 * 
AxB (Tratamientos) 0.8532 ns 
Semana 3 Paramétrico ANVA 
A (Temperatura) 0.0292 * 
B (Dietas) 0.4443 ns 
AxB (Tratamientos) 0.2732 ns 
Semana 4 Paramétrico ANVA 
A (Temperatura) 0.0846 ns 
B (Dietas) 0.2466 ns 
AxB (Tratamientos) 0.3924 ns 
Semana 5 Paramétrico ANVA 
A (Temperatura) 0.0860 ns 
B (Dietas) 0.7149 ns 
AxB (Tratamientos) 0.7969 ns 
Semana 6 Paramétrico ANVA 
A (Temperatura) 0.1150 ns 
B (Dietas) 0.6024 ns 
AxB (Tratamientos) 0.2213 ns 
Semana 7 Paramétrico ANVA 
A (Temperatura) 0.5171 ns 
B (Dietas) 0.1821 ns 
AxB (Tratamientos) 0.2226 ns 
Semana 8 Paramétrico ANVA 
A (Temperatura) 0.1402 ns 
B (Dietas) 0.2610 ns 
AxB (Tratamientos) 0.0465 * 
Semana 9 Paramétrico ANVA 
A (Temperatura) 0.8611 ns 
B (Dietas) 0.4096 ns 
AxB (Tratamientos) 0.1837 ns 
Semana 10 Paramétrico ANVA 
A (Temperatura) 0.0008 * 
B (Dietas) 0.7033 ns 
AxB (Tratamientos) 0.9391 ns 
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
32 
 
En la semana 2 existe significancia estadística solo en el factor B (Dietas); por otra parte 
en la semana 3 solo existe significancia estadística en la interacción de factor A; asimismo en 
la semana 8 solo existe significancia estadística en la interacción de los factores AxB 
(Tratamientos); Y en la semana 10 solo existió significancia estadística en el factor A 
(Temperatura). 
Se muestra el test de Tukey en la semana 2 para los niveles del factor B (dietas), 
encontrándose que el nivel b1 con la dieta de alimento comercial se obtienen mayor peso de 
larvas de Ranitomeya sirensis (Tabla 14). 
Tabla 14. Test de Tukey (α = 0,05) del factor dietas en la semana 2. 
Niveles Medias (mm) E.E. Significancia 
b1 (alimento comercial Nutrafin) 20.9000 0.2338 a  
b2 (larvas de zancudo) 20.0400 0.2338  b 
Letras distintas presentan significancia estadística para (p<=0,05). 
Von May et al. (2009) afirman que durante la etapa larval, Ranitomeya sirensis se 
alimentan principalmente de fitoplancton que se acumula en las paredes porosas de sus 
hospederos naturales, así como de restos vegetales caídos de los bosques. Además, las larvas 
de mosquitos que se encuentran en el agua empozada también sirven como fuente de alimento 
para Ranitomeya sirensis. Sin embargo, mayor desarrollo de larvas, con 2 semanas de 
evaluación, se registra con la dieta de alimento comercial de marca Nutrafin, siendo superior a 
la dieta de larvas de zancudo. 
Se muestra el test de Tukey en la semana 3 para los niveles del factor A (temperatura), 
encontrándose que el nivel a2 con la temperatura de 26°C a 29°C se obtienen mayor peso en 
ranas de Ranitomeya sirensis (Tabla15). 
Tabla 15. Test de Tukey (α = 0,05) del factor temperatura en la semana 3. 
Niveles Medias (mm) E.E. Significancia 
a2 (26-29 °C) 25.8875 0.3464 a  
a1 (23-25.9 °C) 24.6750 0.3464  b 
Letras distintas presentan significancia estadística para (p<=0,05). 
33 
 
Ranitomeya sirensis al ser especímenes ectotermos, dependen de la temperatura ambiente 
para el proceso de crecimiento, siendo así esta variable una de las más importantes en la 
variabilidad de tamaño durante la metamorfosis de los renacuajos, tal como lo indica Smith-
Gill y Berven (1979). 
El test de Tukey en la semana 8 para la interacción de los niveles del factor A 
(temperatura) y factor B (dietas), encontrándose que en el Tratamiento 3, conformado por la 
interacción del nivel a2 (Temperatura de 26°C a 29°C) y b1 (alimento comercial) se registra el 
mayor longitud de renacuajos de Ranitomeya sirensis (Tabla 16). 
Tabla 16. Test de Tukey (α = 0,05) de la interacción de los factores temperatura y dietas en la 
semana 8. 
Factor A Factor B Trat. 
Medias 
(mm) 
E.E. Significancia 
a2 (26-29 °C) b1 (alimento comercial Nutrafin) T3 32.4750 0.6252 a  
a1 (23-25.9 °C) b2 (larvas de zancudo) T2 32.2250 0.6252 a b 
a2 (26-29 °C) b2 (larvas de zancudo) T4 31.8250 0.6252 a b 
a1 (23-25.9 °C) b1 (alimento comercial Nutrafin) T1 30.1000 0.6252  b 
Letras distintas presentan significancia estadística para (p<=0,05). 
Mayores longitudes en renacuajos de Ranitomeya sirensis se registra con la interacción 
de a2 (Temperatura de 26-29 °C) Y b1 (dieta de alimento comercial), puesto que se emplea el 
rango de la temperatura ideal para el desarrollo de los renacuajos, tal como lo indica Whitaker 
(2001), quien dice que en tierras bajas donde habiten ranas tropicales deben conservarse en un 
rango de temperatura de 24-30 °C. Puesto que la especie de Ranitomeya sirensis habitan en las 
tierras bajas de bosques primarios y secundarios, como lo indica Lotters et al. (2007).  
De manera similar, Aguiar (2013) indica que la dieta va a ser relacionado por acción y 
efecto de la temperatura, siendo que mayor crecimiento en tamaño de renacuajos de 
Ceratophrys stolzmanni se obtienen en temperatura de 30 °C que en temperatura de 27 °C.  
Por otra parte, la dieta de alimento comercial al tener mayor contenido proteico es 
recomendado para el adecuado desarrollo de los renacuajos de Ranitomeya sirensis, tal como 
34 
 
lo recomienda Gil (2017), quien indica que es necesario contar con alimentos con buen 
contenido proteico en el desarrollo de programas nutricionales para ranas. 
Así mismo es importante resaltar que en todos los tratamientos se obtienen renacuajos 
con longitudes en rango de 30.100 mm a 32.475 mm, siendo esta media similar a lo registrado 
por Blass (2009) para los renacuajos de Ranitomeya lamasi durante la semana 8 de su 
evaluación, puesto que estos renacuajos tenían una media de 3.1 cm (31 mm) de longitud. 
Se muestra el test de Tukey en la semana 10 para los niveles del factor A (temperatura), 
encontrándose que el nivel a2 con la temperatura de 26°C a 29°C se obtienen mayor peso en 
renas de Ranitomeya sirensia  (Tabla 17). 
Tabla17. Test de Tukey (α = 0,05) del factor temperatura en la semana 10. 
Niveles Medias E.E. Significancia 
a2 (26-29 °C) 11.3000 0.1133 a  
a1 (23-25.9 °C) 10.5875 0.1133  B 
Letras distintas presentan significancia estadística para (p<=0,05). 
Se evidencia que la dosis con menor temperatura obtiene ranas de menor tamaño, tal como 
lo revela Smith-Gill y Berven (1979) sugieren que temperaturas bajas pueden retrasar el 
crecimiento de los organismos, lo que resulta en una etapa más larga de desarrollo específica 
para alcanzar un tamaño determinado. 
Similar resultado obtuvo Ramos (2005) asegura que en la cría artificial de las ranas 
venenosas Dendrobates truncatus y Dendrobates auratus, demostró que los individuos 
manejados con mayor temperatura controlada a 24°C aceleraron su desarrollo en comparación 
de los animales que se encontraban a temperatura ambiente (18-22 °C) 
Con temperatura de 26-29 °C se obtienen ranas con 11.30 mm de longitud, siendo esta 
medida superior a los registrados por Blass (2009) para la décima semana de evaluación en la 
especie Ranitomeya lamasi, registrando una longitud de 1.00 cm (10.00 mm) en ranas 
manejadas de forma ex situ. Esta diferencia de resultados se debe a que Blass (2009) realizó el 
experimento con temperatura ambiente, registrando una media de 23.9 °C. De la misma manera 
Según Brattström (1963), la temperatura no solo influye en la absorción de energía, sino que 
35 
 
también es la principal causa de la variación en el tamaño y la edad en que se produce la 
metamorfosis de los organismos.  
36 
 
V. CONCLUSIONES 
1. Ranitomeya sirensis evidenció mayor peso promedio con el rango de temperatura 
de 26-29°C, con valores de 0.33 g en la semana 3 y 0.61 g en la semana 10. 
Asimismo, mayor peso con la dieta de alimento comercial dado que se evidenció 
mayores promedios con valores de 0.57 g en la semana 8 y 0.61 g para la semana 
10. 
2. Ranitomeya sirensis evidenció mayor longitud promedio con el rango de 
temperatura de 26- 29°C, con valores de 25.88 ± 0.34mm en la semana 3, 
32.42±0.62 mm en la semana 8 y 11.30 ± 0.11 mm en la semana 10. Asimismo, 
mayor longitud con la dieta de alimento comercial dado que se evidenció mayores 
promedios con valores 20.90 ± 0.23 mm en la semana 2 y 32.42 ± 0.62 mm para 
la semana 8. 
 
  
37 
 
VI. PROPUESTAS A FUTURO 
1. Seguir con la investigación sobre alimentación y valor nutricional, considerando 
nicho trófico de su entorno natural en fase adulta de Ranitomeya sirensis. 
2. Realizar el seguimiento de Ranitomeya sirensis que fueron liberadas en su hábitat 
e implementar metodologías de marcación, así como planes de recaptura para 
futuros proyectos de investigación. 
3. Realizar investigación sobre el uso de enzimas producidas por estas ranas para el 
estudio de fármacos como analgésicos, mejoras en personas con ansiedad a fumar 
o de uso ornamental para crianza en terrarios. 
4. Investigar parámetros físico-químicos y condiciones del agua en bambúes, 
bromelias y cavidades de Dendrocalamus asper 
5. Impulsar la protección a través de programas y proyectos para minimizar la alta 
depredación tanto de su especie como su ecosistema, así como implementar planes 
de rescate de fauna anfibia y reintroducción. 
 
  
38 
 
VII. REFERENCIA 
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43 
 
Bach. En Recursos Naturales Renovables mención Forestales. Tingo María. 
Universidad Nacional Agraria de la Selva. 37p. 
 
 
  
44 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
VIII. ANEXO 
 
 
 
  
45 
 
Anexo A. Datos registrados y procesados 
Tabla 18.  Datos registrados de pesos en Ranitomeya sirensis durante las 10 semanas de 
evaluación. 
T° Dietas Trat. 
Semana 
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 
T°1 
23-25.9 °C 
a1 
D1 
alimento 
comercial 
b1 
T1 0.01 0.04 0.18 0.32 0.42 0.44 0.46 0.46 0.56 0.59 0.6 
T1 0.02 0.06 0.18 0.32 0.48 0.48 0.56 0.54 0.58 0.6 0.59 
T1 0.01 0.05 0.18 0.36 0.48 0.46 0.52 0.52 0.72 0.78 0.62 
T1 0.02 0.06 0.16 0.28 0.34 0.38 0.46 0.54 0.54 0.6 0.61 
D2 
Larvas de 
zancudo 
deshidratado 
b2 
T2 0.01 0.05 0.16 0.24 0.38 0.4 0.49 0.48 0.49 0.58 0.58 
T2 0.01 0.05 0.17 0.32 0.44 0.46 0.58 0.42 0.4 0.58 0.56 
T2 0.02 0.06 0.18 0.24 0.34 0.41 0.56 0.52 0.52 0.6 0.59 
T2 0.02 0.06 0.18 0.22 0.26 0.3 0.52 0.46 0.5 0.59 0.58 
T°2 
26-29 °C 
a2 
D1 
alimento 
comercial 
b1 
T3 0.02 0.05 0.18 0.31 0.41 0.4 0.54 0.53 0.54 0.62 0.6 
T3 0.02 0.06 0.18 0.32 0.42 0.41 0.54 0.54 0.55 0.72 0.65 
T3 0.01 0.05 0.19 0.36 0.46 0.44 0.55 0.54 0.55 0.63 0.62 
T3 0.02 0.05 0.2 0.34 0.42 0.45 0.55 0.54 0.55 0.58 0.6 
D2 
Larvas de 
zancudo 
deshidratado 
b2 
T4 0.01 0.06 0.19 0.36 0.45 0.47 0.56 0.55 0.56 0.58 0.6 
T4 0.02 0.06 0.17 0.32 0.42 0.46 0.54 0.48 0.54 0.6 0.62 
T4 0.02 0.06 0.16 0.34 0.43 0.46 0.55 0.48 0.56 0.56 0.61 
T4 0.02 0.07 0.18 0.34 0.48 0.47 0.56 0.54 0.58 0.76 0.6 
 Tabla 19.  Prueba de Kruskal Wallis para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la semana 
0. 
Variable  Niveles N Media D.E. Medianas G.L. H p 
Semana 0 a1 8 0.0150 0.0053 0.015 1 0.7059 0.6084ns 
Semana 0 a2 8 0.0175 0.0046 0.020    
Semana 0 b1 8 0.0163 0.0052 0.020 1 0 >0.9999 ns 
Semana 0 b2 8 0.0163 0.0052 0.020    
Semana 0 T1 (a1:b1) 4 0.0150 0.0058 0.015 3 0.7059 0.8013 ns 
Semana 0 T2 (a1:b2) 4 0.0150 0.0058 0.015    
Semana 0 T3 (a2:b1) 4 0.0175 0.0050 0.020    
Semana 0 T4 (a2:b2) 4 0.0175 0.0050 0.020    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
46 
 
Tabla 20. Comparación múltiple de medias de la variable pesos en los factores y sus 
interacciones en la semana 0 
Niveles Media Ranks Significancia (0,05) 
a1 0.0150 7.5 a 
a2 0.1075 9.5 a 
b1 0.0163 8.5 a 
b2 0.0163 8.5 a 
a1:b2 (T2) 0.0150 7.5 a 
a1:b1 (T1) 0.0150 7.5 a 
a2:b2 (T4) 0.0175 9.5 a 
a2:b1 (T3) 0.0175 9.5 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
Tabla 21. Prueba de Kruskal Wallis para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la semana 1 
Variable Niveles N Media D.E. Medianas G.L. H p 
Semana 1 a1 8 0.0537 0.0074 0.055 1 0.6204 0.5061ns 
Semana 1 a2 8 0.0575 0.0071 0.06    
Semana 1 b1 8 0.0525 0.0071 0.05 1 2.3189 0.1699 ns 
Semana 1 b2 8 0.0587 0.0064 0.06    
Semana 1 T1 (a1:b1) 4 0.0525 0.0096 0.055 3 4.2739 0.1590 ns 
Semana 1 T2 (a1:b2) 4 0.0550 0.0058 0.055    
Semana 1 T3 (a2:b1) 4 0.0525 0.005 0.05    
Semana 1 T4 (a2:b2) 4 0.0625 0.005 0.06    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
Tabla 22. Comparación múltiple de medias de la variable pesos en los factores y sus 
interacciones en la semana 1 
Niveles media ranks significancia 
a1 0.0538 7.5625 a 
a2 0.0575 9.4375 a 
b1 0.0525 6.6875 a 
b2 0.0588 10.3125 a 
a2:b1 (T3) 0.0525 6.2500 a 
a1:b1 (T1) 0.0525 7.1300 a 
a1:b2 (T2) 0.0550 8.0000 a 
a2:b2 (T4) 0.0625 12.6300 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
47 
 
Tabla 23. Análisis de varianza para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la semana 2. 
F.V SC GL CM F p-valor 
A 0.0002 1 0.0002 2.0000 0.1827 ns 
B 0.0002 1 0.0002 2.0000 0.1827 ns 
A*B 0.0001 1 0.0001 0.8889 0.3644 ns 
Error 0.0014 12 0.0001   
Total 0.0019 15    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
Tabla 24. Prueba Tukey de la variable pesos en los factores y sus interacciones en la semana 2 
Niveles Medias n E.E. Sig 
a2 0.1812 8 0.0037 a 
a1 0.1737 8 0.0037 a 
b1 0.1812 8 0.0037 a 
b2 0.1737 8 0.0037 a 
a2 b1 0.1875 4 0.0053 a 
a2 b2 0.1750 4 0.0053 a 
a1 b1 0.1750 4 0.0053 a 
a1 b2 0.1725 4 0.0053 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
Tabla 25. Prueba de Kruskal Wallis para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la semana 3. 
Variable Niveles N media D.E. Mediana g.l. H p 
Semana 3 a1 8 0.2875 0.0501 0.3 1 3.98 0.0413 * 
Semana 3 a2 8 0.3362 0.0185 0.34    
Semana 3 b1 8 0.3262 0.0267 0.32 1 0.54 0.4970 ns 
Semana 3 b2 8 0.2975 0.055 0.32    
Semana 3 T1 (a1:b1) 4 0.3200 0.0327 0.32 3 6.68 0.0725 ns 
Semana 3 T2 (a1:b2) 4 0.2550 0.0443 0.24    
Semana 3 T3 (a2:b1) 4 0.3325 0.0222 0.33    
Semana 3 T4 (a2:b2) 4 0.3400 0.0163 0.34    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
48 
 
Tabla 26. Comparación múltiple de medias de la variable pesos en los factores y sus 
interacciones en la semana 3 
Niveles Media Rank Significancia 
a1 0.2875 6 a  
a2 0.3362 11  b 
b2 0.2975 8 a 
b1 0.3263 9 a 
a1:b2 0.2550 4 a 
a1:b1 0.3200 9 a 
a2:b1 0.3325 10 a 
a2:b2 0.3400 12 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
Tabla 27. Análisis de varianza para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la semana 4. 
F.V SC GL CM F p-valor 
A 0.0077 1 0.0077 2.7122 0.1255 ns 
B 0.0033 1 0.0033 1.1712 0.3004 ns 
A*B 0.0086 1 0.0086 3.031 0.1072 ns 
Error 0.0339 12 0.0028   
Total 0.0534 15    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
Tabla 28. Prueba Tukey de la variable pesos en los factores y sus interacciones en la semana 4 
Niveles Medias n E.E. Sig 
a2 0.4363 8 0.0188 a 
a1 0.3925 8 0.0188 a 
b1 0.4288 8 0.0188 a 
b2 0.4000 8 0.0188 a 
a2 b2 0.4450 4 0.0266 a 
a1 b1 0.4300 4 0.0266 a 
a2 b1 0.4275 4 0.0266 a 
a1 b2 0.3550 4 0.0266 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
49 
 
Tabla 29. Prueba de Kruskal Wallis para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la semana 5. 
Variable  Niveles N Media D.E. Medianas G.L. H p 
Semana 5 a1 8 0.4163 0.058 0.425 1 1 0.3392 ns 
Semana 5 a2 8 0.4450 0.0267 0.455    
Semana 5 b1 8 0.4325 0.0333 0.44 1 0.33 0.5866 ns 
Semana 5 b2 8 0.4288 0.0587 0.46    
Semana 5 T1 (a1:b1) 4 0.4400 0.0432 0.45 3 6.19 0.0969 ns 
Semana 5 T2 (a1:b2) 4 0.3925 0.067 0.405    
Semana 5 T3 (a2:b1) 4 0.4250 0.0238 0.425    
Semana 5 T4 (a2:b2) 4 0.4650 0.0058 0.465    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
Tabla 30. Comparación múltiple de medias de la variable pesos en los factores y sus 
interacciones en la semana 5 
Niveles media ranks significancia 
a1 0.4163 7.3125 a 
a2 0.4450 9.6875 a 
b1 0.4325 7.8125 a 
b2 0.4288 9.1875 a 
a1:b2 0.3925 5.38 a 
a2:b1 0.4250 6.38 a 
a1:b1 0.4400 9.25 a 
a2:b2 0.4650 13 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
Tabla 31. Prueba de Kruskal Wallis para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la semana 6. 
Variable  Niveles N Media D.E. Medianas G.L. H p 
Semana 6 a1 8 0.5188 0.0461 0.52 1 1.1 0.3125 ns 
Semana 6 a2 8 0.5487 0.0083 0.55    
Semana 6 b1 8 0.5225 0.0403 0.54 1 1.86 0.1874 ns 
Semana 6 b2 8 0.5450 0.0283 0.555    
Semana 6 T1 (a1:b1) 4 0.5000 0.049 0.49 3 3.07 0.3677 ns 
Semana 6 T2 (a1:b2) 4 0.5375 0.0403 0.54    
Semana 6 T3 (a2:b1) 4 0.5450 0.0058 0.545    
Semana 6 T4 (a2:b2) 4 0.5525 0.0096 0.555    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
50 
 
Tabla 32.  Comparación múltiple de medias de la variable pesos en los factores y sus 
interacciones en la semana 6 
Niveles media ranks significancia 
a1 0.5188 7.25 a 
a2 0.5488 9.75 a 
b1 0.5225 6.875 a 
b2 0.5450 10.13 a 
a1:b1 0.5000 5.25 a 
a2:b1 0.5450 8.5 a 
a1:b2 0.5375 9.25 a 
a2:b2 0.5525 11 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
Tabla 33.  Prueba de Kruskal Wallis Para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la semana 
7. 
Variable  Niveles N Media D.E. Medianas G.L. H p 
Semana 7 a1 8 0.4925 0.044 0.50 1 3.19 0.0733 ns 
Semana 7 a2 8 0.525 0.0283 0.54    
Semana 7 b1 8 0.5262 0.0277 0.54 1 2.01 0.1441 ns 
Semana 7 b2 8 0.4913 0.0432 0.48    
Semana 7 T1 (a1:b1) 4 0.5150 0.0379 0.53 3 5.53 0.1173 ns 
Semana 7 T2 (a1:b2) 4 0.4700 0.0416 0.47    
Semana 7 T3 (a2:b1) 4 0.5375 0.005 0.54    
Semana 7 T4 (a2:b2) 4 0.5125 0.0377 0.51    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
Tabla 34.  Comparación múltiple de medias de la variable pesos en los factores y sus 
interacciones en la semana 7 
Niveles media ranks significancia 
a1 0.4925 6 a 
a2 0.5250 11 a 
b2 0.4913 7 a 
b1 0.5263 10 a 
a1:b2 0.4700 4 a 
a1:b1 0.5150 9 a 
a2:b2 0.5125 10 a 
a2:b1 0.5375 12 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
51 
 
Tabla 35. Análisis de varianza para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la semana 8. 
F.V SC GL CM F p-valor 
A 0.0009 1 0.0009 0.368 0.5554 ns 
B 0.0121 1 0.0121 4.9472 0.0461 * 
A*B 0.0182 1 0.0182 7.4514 0.0183 * 
Error 0.0294 12 0.0024   
Total 0.0606 15    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
Tabla 36. Prueba Tukey de la variable pesos en los factores y sus interacciones en la semana 8 
Niveles Medias n E.E. Significancia 
a2 0.5537 8 0.0175 a 
a1 0.5387 8 0.0175 a 
b1 0.5737 8 0.0175 a  
b2 0.5188 8 0.0175  b 
a1 b1 0.6000 4 0.0247 a  
a2 b2 0.5600 4 0.0247 a b 
a2 b1 0.5475 4 0.0247 a b 
a1 b2 0.4775 4 0.0247  b 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
Tabla 37. Prueba de Kruskal Wallis para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la semana 9. 
Variable  Niveles N Media D.E. Medianas G.L. H p 
Semana 9 a1 8 0.6150 0.0672 0.595 1 0.14 0.7380 ns 
Semana 9 a2 8 0.6312 0.0716 0.61    
Semana 9 b1 8 0.6400 0.0715 0.61 1 2.82 0.0953 ns 
Semana 9 b2 8 0.6062 0.0635 0.585    
Semana 9 T1 (a1:b1) 4 0.6425 0.0918 0.6 3 3.03 0.3729 ns 
Semana 9 T2 (a1:b2) 4 0.5875 0.0096 0.585    
Semana 9 T3 (a2:b1) 4 0.6375 0.0591 0.625    
Semana 9 T4 (a2:b2) 4 0.6250 0.0915 0.59    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
52 
 
Tabla 38.  Comparación múltiple de medias de la variable pesos en los factores y sus 
interacciones en la semana 9. 
Niveles media ranks significancia 
a1 0.6150 8.0625 a 
a2 0.6313 8.9375 a 
b2 0.6063 6.5 a 
b1 0.6400 10.5 a 
a1:b2 0.5875 5.75 a 
a2:b2 0.6250 7.25 a 
a1:b1 0.6425 10.38 a 
a2:b1 0.6375 10.63 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
Tabla 39. Análisis de varianza para variable pesos de Ranitomeya sirensis en la semana 10. 
F.V SC GL CM F p-valor 
A 0.0018 1 0.0018 7.4103 0.0185 * 
B 0.0014 1 0.0014 5.7692 0.0334 * 
A*B 0.0003 1 0.0003 1.2564 0.2843 ns 
Error 0.0029 12 0.0002   
Total 0.0064 15    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
Tabla 40.  Prueba Tukey de la variable pesos en los factores y sus interacciones en la semana 
10. 
Niveles Medias n E.E. Significancia 
a2 0.6125 8 0.0055 a  
a1 0.5913 8 0.0055  b 
b1 0.6112 8 0.0055 a  
b2 0.5925 8 0.0055  b 
a2 b1 0.6175 4 0.0078 a 
a2 b2 0.6075 4 0.0078 a 
a1 b1 0.605 4 0.0078 a 
a1 b2 0.5775 4 0.0078 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
53 
 
Tabla 41.  Datos registrados de longitud en Ranitomeya sirensis durante las 10 semanas de 
evaluación. 
T° DIETAS TRAT 
Semana 
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 
T1 
23-25.9 
°C 
a1 
D1 
alimento 
comercial 
b1 
T1 10.5 13.90 20 23.60 26.20 27.70 28.00 29.40 29.80 30.80 10.60 
T1 10.6 14.90 21.8 25.10 30.00 28.30 29.00 29.20 29.60 31.20 10.80 
T1 10.6 15.10 22.5 25.50 28.60 28.40 29.20 29.50 30.00 30.60 10.50 
T1 10.5 13.10 20.5 22.60 23.10 28.40 29.30 29.80 31.00 27.00 10.60 
D2 
Larvas de 
zancudo 
deshidratado 
b2 
T2 10.5 15.10 20.4 24.20 26.20 29.00 31.00 31.00 33.00 28.70 10.10 
T2 10.5 15.60 20.5 24.80 26.70 28.40 29.60 30.80 31.20 31.20 10.00 
T2 10.5 15.50 20.4 25.10 27.20 28.60 29.20 31.20 31.20 30.50 11.20 
T2 10.5 14.30 20.3 26.50 26.70 29.10 31.50 33.20 33.50 30.60 10.90 
T2 
26-29 
°C 
a2 
D1 
alimento 
comercial 
b1 
T3 10.5 15.60 20.2 25.10 29.40 28.80 29.70 30.60 31.30 31.40 11.30 
T3 10.6 14.80 21.3 26.50 29.00 30.50 32.20 31.60 33.10 30.40 11.20 
T3 10.6 15.20 20.4 27.00 29.20 31.50 31.50 31.20 33.50 30.20 11.30 
T3 10.5 15.10 20.5 25.30 29.50 29.70 31.60 30.50 32.00 31.60 11.50 
D2 
Larvas de 
zancudo 
deshidratado 
b2 
T4 10.5 15.20 19.4 25.40 26.00 30.60 31.80 31.60 31.90 28.40 11.20 
T4 10.5 15.30 19.4 26.50 27.00 33.20 32.40 33.30 33.30 30.40 11.10 
T4 10.5 15.30 19.6 25.60 28.10 31.70 31.80 32.40 32.90 30.10 11.30 
T4 10.5 15.40 20.3 25.70 29.00 25.40 26.60 27.00 29.20 29.00 11.50 
 
Tabla 42.  Prueba de Kruskal Wallis para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la 
semana 0. 
Variable Niveles N Media D.E. Medianas G.L. H p 
Semana 0 a1 8 10.5250 0.0463 10.5 1 0 >0.9999 ns 
Semana 0 a2 8 10.5250 0.0463 10.5    
Semana 0 b1 8 10.5500 0.0535 10.55 1 2.8235 0.0769 ns 
Semana 0 b2 8 10.5000 0 10.5    
Semana 0 T1 (a1:b1) 4 10.5500 0.0577 10.55 3 2.8235 1.1718 ns 
Semana 0 T2 (a1:b2) 4 10.5000 0 10.5    
Semana 0 T3 (a2:b1) 4 10.5500 0.0577 10.55    
Semana 0 T4 (a2:b2) 4 10.5000 0 10.5    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
54 
 
Tabla 43.  Comparación múltiple de medias de la variable longitud en los factores y sus 
interacciones en la semana 0. 
Niveles Media Ranks Significancia 
a1 10.5250 8 a 
a2 10.5250 10 a 
b1 10.5500 9 a 
b2 10.5000 9 a 
a1:b2 10.5000 8 a 
a1:b1 10.5500 8 a 
a2:b2 10.5000 10 a 
a2:b1 10.5500 10 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
Tabla 44.  Prueba de Kruskal Wallis para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la 
semana 1. 
Variable Niveles N Media D.E. Medianas G.L. H p 
semana 1 a1 8 14.6875 0.8593 15 1 2.0101 0.1660 ns 
semana 1 a2 8 15.2375 0.2326 15.25    
semana 1 b1 8 14.7125 0.8132 15 1 3.1875 0.0765 ns 
semana 1 b2 8 15.2125 0.4016 15.3    
semana 1 T1 (a1:b1) 4 14.2500 0.9292 14.4 3 5.818 0.1177 ns 
semana 1 T2 (a1:b2) 4 15.1250 0.5909 15.3    
semana 1 T3 (a2:b1) 4 15.1750 0.3304 15.15    
semana 1 T4 (a2:b2) 4 15.3000 0.0816 15.3    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
Tabla 45.  Comparación múltiple de medias de la variable longitud en los factores y sus 
interacciones en la semana 1. 
Niveles Media Ranks Significancia 
a1 14.6875 7.5 a 
a2 15.2375 9.5 a 
b1 14.7125 8.5 a 
b2 15.2125 8.5 a 
a1:b2 14.2500 7.5 a 
a1:b1 0.0150 7.5 a 
a2:b2 15.3000 9.5 a 
a2:b1 15.1750 9.5 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
55 
 
Tabla 46. Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 2. 
F.V SC GL CM F p-valor 
A 1.7556 1 1.7556 4.0148 0.0682 ns 
B 2.9756 1 2.9756 6.8047 0.0229 * 
A*B 0.0156 1 0.0156 0.0357 0.8532 ns 
Error 5.2475 12 0.4373   
Total 9.9944 15    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
Tabla 47.  Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 2. 
Niveles Medias n E.E. Significancia 
a1 20.8000 8 0.2338 a 
a2 20.1400 8 0.2338 a 
b1 20.9000 8 0.2338 a  
b2 20.0400 8 0.2338  b 
a1 b1 21.2000 4 0.3306 a 
a2 b1 20.6000 4 0.3306 a 
a1 b2 20.4000 4 0.3306 a 
a2 b2 19.6750 4 0.3306 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
Tabla 48. Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 3. 
F.V SC GL CM F p-valor 
A 5.8806 1 5.8806 6.127 0.0292 * 
B 0.6006 1 0.6006 0.6258 0.4443 ns 
A*B 1.2656 1 1.2656 1.3186 0.2732 ns 
Error 11.5175 12 0.9598   
Total 19.2644 15    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
 
56 
 
Tabla 49.  Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 3. 
Niveles Medias n E.E. Significancia 
a2 25.8875 8 0.3464 a  
a1 24.6750 8 0.3464  b 
b2 25.4750 8 0.3464 a 
b1 25.0875 8 0.3464 a 
a2 b1 25.9750 4 0.4898 a 
a2 b2 25.8000 4 0.4898 a 
a1 b2 25.1500 4 0.4898 a 
a1 b1 24.2000 4 0.4898 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
Tabla 50. Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 4 
F.V SC GL CM F p-valor 
A 9.7656 1 9.7656 3.5337 0.0846 ns 
B 4.1006 1 4.1006 1.4838 0.2466 ns 
A*B 2.1756 1 2.1756 0.7873 0.3924 ns 
Error 33.1625 12 2.7635   
Total 49.2044 15    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
Tabla 51.  Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 4. 
Niveles Medias n E.E. Sig 
a2 28.4000 8 0.5877 a 
a1 26.8375 8 0.5877 a 
b1 28.1250 8 0.5877 a 
b2 27.1125 8 0.5877 a 
a2 b1 29.2750 4 0.8312 a 
a2 b2 27.5250 4 0.8312 a 
a1 b1 26.9750 4 0.8312 a 
a1 b2 26.7000 4 0.8312 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
57 
 
Tabla 52. Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 5. 
F.V SC GL CM F p-valor 
A 11.3906 1 11.3906 3.4974 0.0860 ns 
B 0.4556 1 0.4556 0.1399 0.7149 ns 
A*B 0.2256 1 0.2256 0.0693 0.7969 ns 
Error 39.0825 12 3.2569   
Total 51.1544 15    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
Tabla 53.  Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 5. 
Niveles Medias n E.E. Sig 
a2 30.1750 8 0.6381 a 
a1 28.4875 8 0.6381 a 
b2 29.5000 8 0.6381 a 
|b1 29.1625 8 0.6381 a 
a2 b2 30.2250 4 0.9023 a 
a2 b1 30.1250 4 0.9023 a 
a1 b2 28.7750 4 0.9023 a 
a1 b1 28.2000 4 0.9023 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
Tabla 54. Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 6. 
F.V SC GL CM F p-valor 
A 7.29 1 7.29 2.8876 0.1150 ns 
B 0.7225 1 0.7225 0.2862 0.6024 ns 
A*B 4.2025 1 4.2025 1.6646 0.2213 ns 
Error 30.295 12 2.5246   
Total 42.51 15    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
58 
 
Tabla 55.  Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 6. 
Niveles Medias n E.E. Significancia 
a2 30.9500 8 0.5618 a 
a1 29.6000 8 0.5618 a 
b2 30.4900 8 0.5618 a 
b1 30.0600 8 0.5618 a 
a2 b1 31.2500 4 0.7944 a 
a2 b2 30.6500 4 0.7944 a 
a1 b2 30.3250 4 0.7944 a 
a1 b1 28.8750 4 0.7944 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
Tabla 56. Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 7. 
F.V SC GL CM F p-valor 
A 1.0506 1 1.0506 0.4456 0.5171 ns 
B 4.7306 1 4.7306 2.0065 0.1821 ns 
A*B 3.9006 1 3.9006 1.6544 0.2226 ns 
Error 28.2925 12 2.3577   
Total 37.9744 15    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
Tabla 57.  Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 7. 
Niveles Medias n E.E. Significancia 
a2 31.0250 8 0.5429 a 
a1 30.5125 8 0.5429 a 
b2 31.3125 8 0.5429 a 
b1 30.2250 8 0.5429 a 
a1 b2 31.5500 4 0.7677 a 
a2 b2 31.0750 4 0.7677 a 
a2 b1 30.9750 4 0.7677 a 
a1 b1 29.4750 4 0.7677 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
59 
 
Tabla 58. Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 8 
F.V SC GL CM F p-valor 
A 3.9006 1 3.9006 2.4947 0.1402 ns 
B 2.1756 1 2.1756 1.3915 0.2610 ns 
A*B 7.7006 1 7.7006 4.9251 0.0465 * 
Error 18.7625 12 1.5635   
Total 32.5394 15    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
Tabla 59.  Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 8 
Niveles Medias n E.E. Significancia 
a2 32.1500 8 0.4421 a 
a1 31.1625 8 0.4421 a 
b2 32.0250 8 0.4421 a 
b1 31.2875 8 0.4421 a 
a2 b1 32.4750 4 0.6252 a  
a1 b2 32.2250 4 0.6252 a b 
a2 b2 31.8250 4 0.6252 a b 
a1 b1 30.1000 4 0.6252  b 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
Tabla 60. Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 9 
F.V SC GL CM F p-valor 
A 0.0506 1 0.0506 0.032 0.8611 ns 
B 1.1556 1 1.1556 0.73 0.4096 ns 
A*B 3.1506 1 3.1506 1.9901 0.1837 ns 
Error 18.9975 12 1.5831   
Total 23.3544 15    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
60 
 
Tabla 61.  Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 9 
Niveles Medias n E.E. Significancia 
a2 30.1875 8 0.4448 a 
a1 30.0750 8 0.4448 a 
b1 30.4000 8 0.4448 a 
b2 29.8625 8 0.4448 a 
a2 b1 30.9000 4 0.6291 a 
a1 b2 30.2500 4 0.6291 a 
a1 b1 29.9000 4 0.6291 a 
a2 b2 29.4750 4 0.6291 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
Tabla 62. Análisis de varianza para variable longitud de Ranitomeya sirensis en la semana 10 
F.V SC GL CM F p-valor 
A 2.0306 1 2.0306 19.7708 0.0008 * 
B 0.0156 1 0.0156 0.1521 0.7033 ns 
A*B 0.0006 1 0.0006 0.0061 0.9391 ns 
Error 1.2325 12 0.1027   
Total 3.2794 15    
* : significancia estadística a un nivel de α = 0,05. ns: no existe significancia a un nivel de α = 0,05. 
Tabla 63.  Prueba Tukey de la variable longitud en los factores y sus interacciones en la 
semana 10. 
Niveles Medias n E.E. Significancia 
a2 11.3000 8 0.1133 a  
a1 10.5875 8 0.1133  b 
b1 10.9750 8 0.1133 a 
b2 10.9125 8 0.1133 a 
a2 b1 11.3250 4 0.1602 a 
a2 b2 11.2750 4 0.1602 a 
a1 b1 10.6250 4 0.1602 a 
a1 b2 10.5500 4 0.1602 a 
Letras iguales no representan significancia estadística para (p<=0,05). 
61 
 
Anexo B. Panel fotográfico 
 
Figura 1. Equipos empleados el experimento. 
 
Figura 2. Equipos de protección personal – COVID 19. 
62 
 
 
Figura 3. Toma de datos in-situ para determinar variable temperatura. 
 
Figura 4. Termo-Higrómetro digital para control de temperatura. 
63 
 
 
Figura 5. Materiales para mantenimiento de metamorfos de Ranitomeya sirensis. 
 
Figura 6. Manta térmica con termostato para control de temperatura. 
64 
 
 
Figura 7. Materiales de trabajo en el laboratorio, empleados en el experimento. 
 
Figura 8. Laboratorio condicionado para experimento 
 
65 
 
 
Figura 9. Búsqueda y colecta de huevos de Ranitomeya sirensis. 
 
Figura 10. Colecta de huevos para experimento. 
66 
 
 
Figura 11. Transporte de material genético para inicio de experimento. 
 
Figura 12. Huevos de Ranitomeya sirensis. 
67 
 
 
Figura 13. Huevos fértiles de Ranitomeya sirensis. 
 
Figura 14. Puesta de huevos infértiles de Ranitomeya sirensis. 
68 
 
 
Figura 15. Desarrollo embrionario de huevos fértiles de Ranitomeya sirensis.  
 
Figura 16. Desarrollo embrionario con formación de región cefálica y brote cauda de 
Ranitomeya sirensis. 
69 
 
 
Figura 17. Renacuajo recién eclosionado 
 
Figura 18. Embrión de Rantomeya sirensis con membrana protectora. 
70 
 
 
Figura 19. Vista ventral renacuajo recién eclosionado. 
 
Figura 20. Puesta de tres por eclosionar. 
71 
 
 
Figura 21. Puesta de dos por eclosionar. 
 
Figura 22. Disolución de hígado que sirve como carnada para cultivo de larvas de zancudo 
72 
 
 
Figura 23. Integración con Paramecium para alimento de larvas de zancudo. 
 
Figura 24. Medición de peso del renacuajo en estadios iniciales. 
73 
 
 
Figura 25. Colecta de cultivo de alimento vivo- larvas de zancudo. 
 
Figura 26. Medición de longitud de los renacuajos de cada tratamiento experimental. 
74 
 
 
Figura 27. Registro individual de datos de peso y medida de renacuajos en cada tratamiento  
 
Figura 28. Renacuajo con extremidades anteriores desarrolladas. 
75 
 
 
Figura 29. Renacuajos apunto de exponer las extremidades anteriores. 
 
Figura 30. Alimento comercial Nutrafin Max utilizado en el experimento. 
76 
 
 
Figura 31. Renacuajo con provisión de alimento vivo 
 
Figura 32. Manipulación de renacuajo para toma de datos. 
77 
 
 
Figura 33. Renacuajos en cada tratamiento experimental. 
 
Figura 34. Calibración de temperatura y humedad de laboratorio. 
78 
 
 
Figura 35. Manipulación y toma de datos. 
 
Figura 36. Manipulación y toma de datos. 
79 
 
 
Figura 37.  Xanthosomas para terrario que será ubicados junto a las ranas juveniles hasta la 
liberación  
 
Figura 38. Limpieza y desinfección de Xanthosomas. 
80 
 
 
Figura 39. Materiales e ingredientes para preparación de alimento de cultivo de Drosophila. 
 
 
Figura 40. Alimento vivo moscas de fruta para juveniles en cautiverio. 
81 
 
 
Figura 41. Individuos juveniles en terrarios acondicionados. 
 
Figura 42. Liberación de especímenes juveniles a bambusal BRUNAS. 
 
82 
 
Anexo C.  Autorización de SERFOR 
 
 
83 
 
 
 
 
84 
 
 
 
 
85 
 
 
 
 
86 
 
 
 
 
87 
 
 
 
 
88 
 
 
Anexo D. Examen bromatológico de las dietas. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
1 
 
Anexo E. Ficha de Evaluación 
 
* Elaboración propia 
 
 
 
 
 
 
PESO LONG PESO LONG PESO LONG PESO LONG PESO LONG PESO LONG PESO LONG PESO LONG PESO LONG PESO LONG PESO LONG
T1 T1A1B1R1
T1 T1A1B1R2
T1 T1A1B1R3
T1 T1A1B1R4
T2 T2A1B2R1
T2 T2A1B2R2
T2 T2A1B2R3
T2 T2A1B2R4
T3 T3A2B1R1
T3 T3A2B1R2
T3 T3A2B1R3
T3 T3A2B1R4
T4 T4A2B2R1
T4 T4A2B2R2
T4 T4A2B2R3
T4 T4A2B2R4
a2
26-29 °C
b1
Alimento 
Comercial
b2
Larvas de 
zancudo
FICHA DE EVALUACION SEMANAL RANITAS
SEMANA 6 SEMANA 7 SEMANA 8 SEMANA 9 SEMANA 10
a1
23-25.9 °C
b1
Alimento 
Comercial
b2
Larvas de 
zancudo
SEMANA 0 SEMANA 1 SEMANA 2 SEMANA 3 SEMANA 4 SEMANA 5
PUESTA T° DIETAS T COD ECLOSION
PATA EN 
FORMACION
DOS PATAS 
TRASERAS
PATAS  TOPE MAX BAJA LA COLA
METAMORFOSIS 
COMPLETASIN 
COLA
DATO DE 
RECIEN ECLOSION
CRECIMIENTO
CRECIMIENTO 
CABEZ- COLA
PIGMENTACION
 INICIAL
PIGMENTO 
FUERTE
89 
1 
 
Anexo F. Certificación de especie. 
 
90